在醫(yī)學(xué)教學(xué)、科研和醫(yī)學(xué)工作中,不論是從事基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)的還是臨床醫(yī)學(xué)、預(yù)防醫(yī)學(xué),都需要用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物來進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)。通過對(duì)動(dòng)物的實(shí)驗(yàn)的觀察和分析,來研究和解決醫(yī)學(xué)上存在的許多問題,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法已成為醫(yī)學(xué)科學(xué)研究和教學(xué)工作中必不可少的重要手段。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法是多種多樣的,在醫(yī)學(xué)的各個(gè)領(lǐng)域內(nèi)都有其不同的應(yīng)用,其中一些基本方法都是共同性的,如動(dòng)物的選擇、抓取、固定、麻醉、脫毛、給藥、采血、采尿、急救、處死、尸檢等,不管是從事何種課題的醫(yī)學(xué)研究都要用這套基本方法,因此,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)基本方法,已成為醫(yī)學(xué)科技工作者必須掌握的一項(xiàng)基本功。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)按機(jī)體水平不同的可分為整體實(shí)驗(yàn)和離體實(shí)驗(yàn)兩種,還可進(jìn)一步具體地分為亞細(xì)胞、細(xì)胞、組織、器官,整體動(dòng)物和無損傷動(dòng)物等水平的實(shí)驗(yàn)。按動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的時(shí)間長短可分為急性實(shí)驗(yàn)(2天以內(nèi))、亞急性實(shí)驗(yàn)(1~4周)和慢性實(shí)驗(yàn)(2~6個(gè)月或更長時(shí)間甚至整個(gè)生命期)。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的方法很多,如有生理學(xué)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法;病理生理學(xué)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法;藥理學(xué)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法;病理解剖學(xué)、組織學(xué)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法;微生物學(xué)和免疫學(xué)的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方法等等。下面舉一些動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的常用方法:
1.復(fù)制動(dòng)物模型法此法是動(dòng)物實(shí)驗(yàn)最基本的方法,是采用人工的方法使動(dòng)物在一定致病因素(機(jī)械、化學(xué)、生物和物理)作用下,造成動(dòng)物的組織,器官或全身的一定損傷,復(fù)制成與人類疾病相似的動(dòng)物疾病模型,來研究各種疾病的發(fā)生、發(fā)展規(guī)律及防治方法。
2.切開、分離法此法是以活體動(dòng)物為對(duì)象的整體實(shí)驗(yàn)常用方法。習(xí)慣上把在麻醉情況下,制備一些實(shí)驗(yàn)條件(如活體解剖、分離暴露器官、組織或進(jìn)行一些手術(shù)制備等措施)進(jìn)行研究者稱“急性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)”。其優(yōu)點(diǎn)是比較簡(jiǎn)便,操作后可以即進(jìn)行觀察,實(shí)驗(yàn)條件相對(duì)地較易控制,對(duì)要研究的器官,有可能直接觀察。但存在著麻醉、手術(shù)創(chuàng)造及存活時(shí)間較短等因素,也會(huì)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果帶來一定的影響。因此采用此法應(yīng)注意麻醉深度更適中,手術(shù)要輕巧,少出血、減少創(chuàng)傷,并要熟悉手術(shù)部位的神經(jīng)、血管等解剖。
3.切除和注入提取液法常用于研究?jī)?nèi)分泌器官的生理和病理病變,如研究切除某一腺體后看輻射對(duì)機(jī)體的影響,切除某一腺體后看出現(xiàn)什么癥狀而推論這種腺體的功能;如蝌蚪無甲狀腺素,如注入甲狀腺素,蝌蚪很快變成了蛙。
4.離體組織器官法離體實(shí)驗(yàn)是利用動(dòng)物的離體組織、器官或生物性致病因子(微生物、寄生蟲等),置于一定的存活條件下(如溫度、營養(yǎng)成分、氧氣、水、pH等)進(jìn)行觀察的一種實(shí)驗(yàn)方法。如可利用離體腸管觀察藥物對(duì)腸管動(dòng)物、吸收、通透性、血流情況等的影響,并進(jìn)行作用機(jī)理的分析;利用離體膽囊來篩選引起膽囊舒縮的藥物;利用大腸桿菌或其它細(xì)菌進(jìn)行藥物敏感性實(shí)驗(yàn)。尋找抑制細(xì)菌生長的藥物,并研究其作用規(guī)律,以便為膽道感染的防治提供線索。動(dòng)物組織、細(xì)胞的培養(yǎng)也常用此種方法。離體實(shí)驗(yàn)的優(yōu)點(diǎn)是方法比較簡(jiǎn)單,一般不需要很復(fù)雜的儀器設(shè)備。實(shí)驗(yàn)條件比較容易控制,牽涉的人力較少,因此常被列為分析性研究的一種手段。不足之處是模擬的存活條件畢竟與整體的實(shí)際情況有較大的出入,其結(jié)果也往往與體內(nèi)的變化有一定距離,因此可以作為整體研究的補(bǔ)充和參考。
5.瘺管法用無菌手術(shù)方法給動(dòng)物造成不同的人造瘺管如胃腸道瘺管、膀胱瘺管、唾液腺瘺管、食道瘺管、膽囊瘺管等。這些瘺管可以收集內(nèi)臟液體,是生理學(xué)消化研究的主要方法。此種方法是慢性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)所常用的方法。慢性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)一般是先在無菌操作下制備好實(shí)驗(yàn)?zāi)P停ǒ浌芊ㄊ瞧渲幸环N),待動(dòng)物恢復(fù)健康后進(jìn)行研究。這類研究方法的優(yōu)點(diǎn)在于被研究的對(duì)象,其機(jī)體內(nèi)外環(huán)境已處于較自然的相對(duì)平衡狀態(tài),條件比較穩(wěn)定,所得的結(jié)果接近生理情況。但需要事先制備,術(shù)后護(hù)理,等動(dòng)物恢復(fù)健康后才能從事實(shí)驗(yàn),花費(fèi)時(shí)間較長,工作量較大,因而在選用上受到一定限制。除了用手術(shù)制備的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)外,運(yùn)用藥物或食鉺等措施制備病理模型,如誘發(fā)各種實(shí)驗(yàn)性動(dòng)物疾病模型的方法也可歸為慢性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)。
6.移植法一般是將動(dòng)物的器官、組織或細(xì)胞進(jìn)行相互移植的一種方法。如骨髓移植時(shí),將小鼠A(供體)的骨髓注入到小鼠B的血液中(受體),很快可見脾結(jié)節(jié)化(脾造血)。脾結(jié)節(jié)的數(shù)量反應(yīng)了造血干細(xì)胞的多少,由此可以觀察干細(xì)胞的變化。各小鼠之間的骨髓移植叫同種骨髓移植,同一品系小鼠內(nèi)各小鼠之間的骨髓移植叫同系骨髓,小鼠骨髓移植給大鼠則叫異種骨髓移植。動(dòng)物各種組織、器官的移植也是實(shí)驗(yàn)研究中常用的方法。
7.生物電、活性觀察法對(duì)動(dòng)物體各種生物電用電生理記錄儀進(jìn)行觀察記錄,如心電、肌電、腦電等;對(duì)動(dòng)物組織中各種活動(dòng)物質(zhì)用生物化學(xué)法測(cè)定,如各種酶,激素等。
8.病理解剖學(xué)、組織學(xué)觀察法采用肉眼觀察、光鏡和電鏡檢查,來觀察、分析動(dòng)物各種疾病時(shí)病理組織學(xué)改變。可從組織學(xué)的角度來探討疾病防治機(jī)理,例如通過闌尾組織節(jié)片和肉眼觀察,分析口服中藥、針刺或局部敷藥對(duì)有炎癥闌尾的影響,闡明不同證型時(shí)闌尾變化的病理學(xué)特點(diǎn)以及某些病人用中西醫(yī)結(jié)合非手術(shù)治療后復(fù)發(fā)的原因。近年來由于電子顯微技術(shù)的進(jìn)展,不僅可以觀察到病變時(shí)細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器等亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的變化,而且也可以運(yùn)用電子掃描方法對(duì)動(dòng)物器官的微小結(jié)構(gòu)進(jìn)行完整的表層觀察。
9.免疫學(xué)觀察法注入抗原使動(dòng)物致敏,制備各種抗血清,如常選用新西蘭或大白耳家兔制備病原體免疫血清、間接免疫血清、抗補(bǔ)體抗體血清、抗組織免疫血清等。采用免疫熒光技術(shù)、酶標(biāo)記免疫技術(shù)、放射免疫測(cè)定技術(shù)、免疫電鏡技術(shù)等對(duì)動(dòng)物免疫后各種免疫變化進(jìn)行檢查。
10.其它方法如聯(lián)體動(dòng)物法,條件反射法、生物遺傳法、放射生物法、藥物化學(xué)等等。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的基本操作技術(shù)方法,根據(jù)實(shí)驗(yàn)順序分述如下:
正確的抓取固定動(dòng)物,是為了不損害動(dòng)物健康,不影響觀察指標(biāo),并防止被動(dòng)物咬傷,保證實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行。抓取固定動(dòng)物的方法依實(shí)驗(yàn)內(nèi)容和動(dòng)物類而定。抓取固定動(dòng)物前,必須對(duì)各種動(dòng)物的一般習(xí)性有所了解,抓取固定時(shí)既要小心仔細(xì),不能粗暴,又要大膽敏捷,確實(shí)達(dá)到正確抓取固定動(dòng)物的目的。
(一)小鼠抓取固定方法
小鼠溫順,一般不會(huì)咬人,抓取時(shí)先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠籠或?qū)嶒?yàn)臺(tái)向后拉,在其向前爬行時(shí),用左手拇指和食指抓住小鼠的兩耳和頸部皮膚(見圖11-1之一),將鼠體置于左手心中,把后肢拉直,以無名指按住鼠尾,小指按住后腿即可(圖11-1之二)。人經(jīng)驗(yàn)者直接用左手小指鉤起鼠尾,迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后頸背部皮膚亦可。這種在手中固定方式,能進(jìn)行實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他實(shí)驗(yàn)操作。如進(jìn)行解剖、手術(shù)、心臟采血和尾靜脈注射時(shí),則需將小鼠作一定形式的固定,解剖手術(shù)和心臟采血等均可使動(dòng)物先取背臥位(必要時(shí)先行麻醉),再用大頭針將鼠前后肢依次固定在臘板上。尾靜脈注射時(shí),可用小鼠尾靜脈注射架固定(圖11-2),先根據(jù)動(dòng)物大小選擇好合適的固定架,并打開鼠筒蓋,手提鼠尾巴,讓動(dòng)物頭對(duì)準(zhǔn)鼠筒口并送入筒內(nèi),調(diào)節(jié)鼠筒長短合適后,露出尾巴,固定筒蓋即可進(jìn)行尾靜脈注射或尾靜脈采血等操作。
圖11-1小鼠的抓取固定方法
圖11-2 小鼠尾靜脈注射方法
(二)大鼠的抓取固定方法
大鼠的抓取斯基本同小鼠,只不過大鼠比小鼠牙尖性猛,不易用襲擊方式抓取,否則會(huì)被咬傷手指,抓取時(shí)為避免咬傷,可帶上帆布手套。如果進(jìn)行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃時(shí),同樣可采用左手固定法,只是用拇指和食指捏住鼠耳,余下三指緊捏鼠背皮膚,置于左掌心中,這樣右手即可進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)操作。也可伸開左手之虎口,敏捷地從后,一把抓住。若做手術(shù)或解剖等,則需事先麻醉或處死,然后用細(xì)棉線繩活縛腿,背m.f1411.cn/wszg/臥位綁在大鼠固定板上;尾靜脈注射時(shí)的固定同小鼠(只需將固定架改為大鼠固定盒即可)。
(三)蛙類的抓取固定方法
蛙類抓取方法宜用左手將動(dòng)物背部貼緊手掌固定,以中指、無名指、小指壓住其左腹側(cè)和后肢,拇指和食指分別壓住左、右前肢、右手進(jìn)行操作(圖11-3)。
圖11-3 蛙、蟾蜍抓取固定方法
在抓取是蟾蜍時(shí),注意勿擠壓其兩則耳部突起之毒腺,以免毒液射進(jìn)眼中。
實(shí)驗(yàn)如需長時(shí)間觀察,可破壞其腦脊髓(觀察神經(jīng)系統(tǒng)反應(yīng)時(shí)不應(yīng)破壞腦脊髓)或麻醉后用大頭針固定在蛙板上。依實(shí)驗(yàn)需要采取俯臥位或仰臥位固定。
(四)豚鼠的抓取固定方法
豚鼠較為膽小易驚,不宜強(qiáng)烈刺激和受驚,所以在抓取時(shí),必須穩(wěn)、準(zhǔn)和迅速。一般抓取方法是:先用手掌迅速扣住鼠背,抓住其肩胛上方,以拇指和食指環(huán)握頸部,另一只手托住臀部(圖11-4)。固定的方式基本同大鼠。
圖11-4 豚鼠的抓取固定方法
(五)兔的抓取固定方法
1.抓。簩(shí)驗(yàn)家兔多數(shù)飼養(yǎng)在籠內(nèi),所以抓取較為方便,一般以右手抓住兔頸部的毛皮提起,然后左手托其臀部或腹部,讓其體重重量的大部分集中在左手上(圖11-5),這樣就避免了抓取過程中的動(dòng)物損傷。不能采用抓雙耳或抓提腹部。
2.固定:一般將家兔的固定分為盒式、臺(tái)式和馬蹄形三種。盒式固定(圖11-6),適用于兔耳采血、耳血管注射等情況;若做血壓測(cè)量、呼吸等實(shí)驗(yàn)和手術(shù)時(shí),則需將兔固定在兔臺(tái)上(圖11-7),四肢用粗棉繩活結(jié)綁住,拉直四肢,將繩綁在兔臺(tái)四周的固定木塊上,頭以固定夾固定或用一根粗棉繩挑過兔門齒綁在兔臺(tái)鐵柱上;馬蹄形固定(圖11-8)多用于腰背部,尤其是顱腦部位的實(shí)驗(yàn),固定時(shí)先剪去兩側(cè)眼眶下部的毛皮,暴露顴骨突起,調(diào)節(jié)固定器兩端釘形金屬棒。使其正好嵌在突起下方的凹處,然后在適當(dāng)?shù)母叨裙潭ń饘匍弧S民R蹄形固定器可使兔取用背臥位和腹臥位,所以是研究中常采用的固定方法。
圖11-5 家兔抓取方法
1、2、3均為不正確的抓取方法(1.可損傷兩腎,2.可造成皮下出血,3.可傷兩耳),4、5為正確的抓取方法。頸后部的皮厚可以抓,并用手托兔體。
圖11-6 家兔盒式固定法
圖11-7 家兔臺(tái)式固定法
(六)狗的抓取固定方法
未經(jīng)訓(xùn)練用于急性實(shí)驗(yàn)的狗性兇惡,能咬人,因此進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí)第一個(gè)步驟就是要綁住狗嘴。馴服的狗綁嘴時(shí)可從側(cè)面靠近輕輕撫摸其頸背部皮毛,然后迅速用布帶縛住其嘴。方法是用布帶迅速兜住狗的下頜,繞到上頜打一個(gè)結(jié),再繞回下頜下打第二結(jié),然后將布帶引至頭后頸項(xiàng)部打第三個(gè)結(jié),并多系一個(gè)活結(jié)(以備麻醉后解脫)。注意捆綁松緊度要適宜(圖11-9),倘若此舉不成,應(yīng)用狗頭鉗夾住其頸部,將狗按倒在地,再綁其嘴。如實(shí)驗(yàn)需要靜脈麻醉時(shí),可先使動(dòng)物麻醉后再移去狗頭鉗,解去綁嘴帶,把動(dòng)物放在實(shí)驗(yàn)臺(tái)上,然后先固定頭部,再固定四肢。
圖11-8家兔馬蹄形固定
圖11-9 狗嘴捆綁法
1.頭部固定:固定狗頭需用一特制的狗頭固定器,狗頭固定器為一圓鐵圈,圈的中央有一弓形鐵,與棒螺絲相連,下面有一根平直鐵閂。操作時(shí)先將狗舌拉出,把狗嘴插入固定器的鐵圈內(nèi),再用平直鐵閂橫貫于犬齒后部的上下頜之間,然后向下旋轉(zhuǎn)棒螺絲,使弓形鐵逐漸下壓在動(dòng)物的下頜骨上,把鐵柄固定在實(shí)驗(yàn)臺(tái)的鐵柱上即可。
2.四肢固定:如采取仰臥位,四肢固定方法與家兔相同。
動(dòng)物在實(shí)驗(yàn)前常常需要作適當(dāng)?shù)姆纸M,那么就要將其標(biāo)記使各組加以區(qū)別。標(biāo)記的方法很多,良好的標(biāo)記方法應(yīng)滿足標(biāo)號(hào)清晰、耐久、簡(jiǎn)便、適用的要求。
常用的標(biāo)記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號(hào)牌等方法。
(一)顏料涂染
這種標(biāo)記方法在實(shí)驗(yàn)室最常使用,也很方便。使用的顏料一般有3-5%苦味酸溶(黃),2%硝酸銀(咖啡色)溶液和0.5%中性品紅(紅色)等。標(biāo)記時(shí)用毛筆或棉簽蘸取上述溶液,在動(dòng)物體的不同部位涂上斑點(diǎn),以示不同號(hào)碼。編號(hào)的原則是:先左后右,從上到下。一般把涂在左前腿上的計(jì)為1號(hào),左側(cè)腹部計(jì)為2號(hào),左后腿為3號(hào),頭頂部計(jì)為4號(hào),腰背部為5號(hào),尾基部為6號(hào),右前腿為7號(hào),右側(cè)腰部為8號(hào),右后腿計(jì)為9號(hào)。若動(dòng)物編號(hào)超過10或更大數(shù)字時(shí),可使用上述兩種不同顏色的溶液,即把一種顏色作為個(gè)倍數(shù),另一種顏色作為十位數(shù),這種交互使用可編到99號(hào),假使把紅的記為十位數(shù),黃色記為個(gè)位數(shù),那么右后腿黃斑,頭頂紅斑,則表示是49號(hào)鼠(圖11-10),其余類推。
圖11-10顏色被毛涂擦標(biāo)記法
(二)烙印法
用刺數(shù)鉗在動(dòng)物耳上刺上號(hào)碼,然后用棉簽蘸著溶在酒精中的黑墨在刺號(hào)上加以涂抹,烙印前最好對(duì)烙印部位預(yù)先用酒精消毒。
(三)號(hào)牌法
用金屬制的牌號(hào)固定于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的耳上,大動(dòng)物可系于頸上。
對(duì)猴、狗、貓等大動(dòng)物有時(shí)可不做特別標(biāo)記,只記錄它們的外表和毛色即可。
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)時(shí),常常需要將選擇好的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,按研究需要分成若干個(gè)組,分組時(shí)為了避免人為的因素影響常應(yīng)用隨機(jī)數(shù)字表進(jìn)行完全隨機(jī)化的分組。
1.將實(shí)驗(yàn)單位隨機(jī)分成兩組 設(shè)有小鼠14號(hào),試用隨機(jī)數(shù)字表將其分成兩組。先將小鼠依次編為1、2、3……14號(hào),然后任意從隨機(jī)數(shù)字表的某一行某一數(shù)字開始抄錄14個(gè)數(shù),編排如下:
動(dòng)物編號(hào) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 |
隨機(jī)數(shù)目 | 16 | 22 | 77 | 94 | 39 | 49 | 54 | 43 | 54 | 82 | 17 | 37 | 93 | 23 |
歸 組 | B | B | A | B | A | A | B | A | B | B | A | A | A | A |
現(xiàn)令單數(shù)代表A組,雙數(shù)代表B組,結(jié)果列入A組的動(dòng)物有8只,列入B組的動(dòng)物有6只。如要使兩組相等,須將A組減少一只,劃入B組。應(yīng)把哪一只小鼠劃入B組,仍可用隨機(jī)數(shù)字表,在上述抄錄的14個(gè)數(shù)后面再抄錄一個(gè)數(shù)字為78,此數(shù)以8除之,因?yàn)闅w入A組的小鼠有8只,故以8除,得余數(shù)6。于是把第6個(gè)A(即編寫為第12號(hào)的小鼠)劃給B組。經(jīng)過這樣調(diào)整,兩組小鼠的分配如下。
A組: | 3 | 5 | 6 | 8 | 11 | 13 | 14 |
B組: | 1 | 2 | 4 | 12 | 7 | 9 | 10 |
2.將實(shí)驗(yàn)單位隨機(jī)分成三組 設(shè)有動(dòng)物15只,隨機(jī)等分成A、B、C三組。將動(dòng)物編號(hào)后,按上述方法,從隨機(jī)數(shù)字表抄錄15個(gè)數(shù)字,將各數(shù)一律以3除之,并以余數(shù)1、2、3代表A、B、C,結(jié)果歸入A組的動(dòng)物6只,歸入B組的動(dòng)物4只,歸入C組的動(dòng)物5只,即:
動(dòng)物號(hào)碼 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 |
隨機(jī)數(shù)目 | 18 | 62 | 40 | 19 | 12 | 40 | 83 | 95 | 34 | 19 | 44 | 91 | 69 | 03 | 30 |
除了后的余數(shù) | 3 | 2 | 1 | 1 | 3 | 1 | 2 | 2 | 1 | 1 | 2 | 1 | 3 | 3 | 3 |
歸 組 | C | B | A | A | C | A | B | B | A | A | B | A | C | C | C |
要使三組的動(dòng)物數(shù)相等,須把原歸A組的6只動(dòng)物中的1只改配到B組去?梢噪S機(jī)數(shù)字表繼續(xù)按斜角線抄錄一個(gè)數(shù)字,得60,以6除之,除盡(相當(dāng)于余數(shù)為6),就可以把第六個(gè)A(即12號(hào))動(dòng)物改為B組。調(diào)整后各組的動(dòng)物編號(hào)如下:
A組: | 3 | 4 | 6 | 9 | 10 |
B組: | 2 | 7 | 8 | 11 | 12 |
C組: | 1 | 5 | 13 | 14 | 15 |
動(dòng)物的被毛常能影響實(shí)驗(yàn)操作和結(jié)果的觀察,因此實(shí)驗(yàn)中常需去除或剪短動(dòng)物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和脫毛三種。
剪毛:固定動(dòng)物后,用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛時(shí)需注意以下幾點(diǎn):
⑴把剪刀貼緊皮膚剪,不可用手提起被毛,以免剪破皮膚;
⑵依次剪毛,不要亂剪;
⑶剪下的毛集中放在一個(gè)容器內(nèi),勿遺留在手術(shù)野和兔臺(tái)周圍,以保證手術(shù)野的清潔和防止注射器等夾毛。
拔毛:兔耳緣靜脈注射或取血時(shí)以及給大、小白鼠作尾靜脈注射時(shí),需用拇指、食指將局部被毛拔去,以利操作。
脫毛:脫毛系指用化學(xué)藥品脫去動(dòng)物的被毛,適用于無菌手術(shù)野的準(zhǔn)備以及觀察動(dòng)物局部皮膚血液循環(huán)和病理變化。
常用脫毛劑的配方:
⑴硫化鈉3g、肥皂粉1g,淀粉7g,加水適量調(diào)成糊狀。
⑵硫化鈉8g、淀粉7g、糖4g、甘油5g、硼砂1g,加水75ml。
⑶硫化鈉8g,溶于100ml水中。
以上脫毛劑配方適用于家兔、大白鼠、小白鼠等小動(dòng)物的脫毛。
⑷硫化鈉10g、生石灰15g,溶于100ml水內(nèi),此配方適用于狗等大動(dòng)物的脫毛。
使用以上各種脫毛劑,都應(yīng)事先剪短被毛,以節(jié)省脫毛劑,并減少對(duì)皮膚的刺激反應(yīng),應(yīng)用時(shí)用棉球蘸脫毛劑,在所需局部涂一薄層,2-3分鐘后,用溫水洗去脫落的被毛,以紗布擦干局部,涂一層油脂即可。
在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,為了觀察藥物對(duì)機(jī)能功能、代謝及形態(tài)引起的變化,常需將藥物注入動(dòng)物體內(nèi)。給藥的途徑和方法是多種多樣的,可根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康、?shí)驗(yàn)動(dòng)物種類和藥物劑型等情況確定。
(一)皮下注射
注射時(shí)以左手拇指和食指提起皮膚,將連有5(1/2)號(hào)針頭的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、貓多在大腿外側(cè),豚鼠在后大腿的內(nèi)側(cè)或小腹部;大白鼠可在側(cè)下腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。
(二)皮內(nèi)注射
皮內(nèi)注射時(shí)需將注射的局部脫去被毛,消毒后,用左手拇指和食指按住皮膚并使之繃緊,在兩指之間,用結(jié)核菌素注射器連4(1/2)細(xì)針頭,緊貼皮膚表層刺入皮內(nèi),然后再向上挑起并再稍刺入,即可注射藥液,此時(shí)可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
(三)肌肉注射
肌肉注射應(yīng)選肌肉發(fā)達(dá),無大血管通過的部位,一般多選臀部。注射時(shí)垂直迅速刺入肌肉,回抽針?biāo)ㄈ鐭o回血,即可進(jìn)行注射。給小白鼠、大白鼠等小動(dòng)物作肌肉注射時(shí),用左手抓住鼠兩耳和頭部皮膚,右手取連有5(1/2)針頭的注射器,將針頭刺入大腿外側(cè)肌肉,將藥液注入。
(四)腹腔注射
用大、小白鼠做實(shí)驗(yàn)時(shí),以左手抓住動(dòng)物,使腹部向上,右手將注射針頭于左(或右)下腹部刺入皮下,使針頭向前推 0.5~1.0cm,再以45度角穿過腹肌,固定針頭,緩緩注入藥液(圖11-11),為避免傷及內(nèi)臟,可使動(dòng)物處于頭低位,使內(nèi)臟移向上腹。若實(shí)驗(yàn)動(dòng)物為家兔,進(jìn)針部位為下腹部的腹白線離開1cm處。
圖11-11 小鼠腹腔注射方法
(五)靜脈注射
1.兔:兔耳部血管分布清晰。兔耳中央為動(dòng)物,耳外緣為靜脈。內(nèi)緣靜脈深不易固定,故不用。外緣靜脈表淺易固定,常用。先拔去注射部位的被毛,用手指彈動(dòng)或輕揉兔耳,使靜脈充盈,左手食指和中指夾住靜脈的近端,拇指繃緊靜脈的遠(yuǎn)端,無名指及小指墊在下面,右手持注射器連6號(hào)針頭盡量從靜脈的遠(yuǎn)端刺入,移動(dòng)拇指于針頭上以固定針頭,放開食指和中指,將藥液注入(圖11-12),然后拔出針頭,用手壓迫針眼片刻。
圖11-12 家兔耳緣靜脈注射方法
2.小白鼠和大白鼠:一般采用尾靜脈注射,鼠尾靜脈有三根,左右兩側(cè)及背側(cè)各一根,左右兩側(cè)尾靜脈比較容易固定,多采用,背側(cè)一根也可采用,但位置容易固定。操作時(shí)先將動(dòng)物固定在鼠筒內(nèi)或扣在燒杯中,使尾巴露出,尾部用45~50℃的溫水浸潤半分鐘或用酒精擦拭使血管擴(kuò)張,并可使表皮角質(zhì)軟化,以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側(cè),使靜脈充盈,用中指從下面托起尾巴,以無名指和小指夾住尾巴的末梢,右手持注射器連4(1/2)號(hào)細(xì)針頭,使針頭與靜脈平行(小于30℃),從尾下四分之一處(約距尾尖2-3厘米)處進(jìn)針,此處皮薄易于刺入,先緩注少量藥液,如無阻力,表示針頭已進(jìn)入靜脈,可繼續(xù)注入。注射完畢后把尾部向注射側(cè)彎曲以止血。如需反復(fù)注射,應(yīng)盡可能從末端開始,以后向尾根部方向移動(dòng)注射(圖11-13)。
圖11-13 小鼠尾靜脈注射方法
3.狗:狗靜脈注射多選前肢內(nèi)側(cè)皮下頭靜脈(圖11-14)或后肢小隱靜脈(圖11-15)注射。注射前由助手將動(dòng)物側(cè)臥,剪去注射部位的被毛,用膠皮帶扎緊(或用手抓緊)靜脈近端,使血管充盈,從靜脈的遠(yuǎn)端將注射針頭平行刺入血管,待有回血后,松開綁帶(或兩手),緩緩注入藥液。
圖11-14 狗前肢頭靜脈注射
圖11-15 狗后肢小隱靜脈注射
4.蛙(或蟾蜍):將蛙或蟾蜍腦脊髓破壞后,仰臥固定于蛙板上,沿腹中線稍左剪開腹肌,可見到腹靜脈貼著腹壁肌肉下行,將注射針頭沿血管平行方向刺入即可(圖11-16)。
圖11-16 蛙腹壁靜靜注射
幾種常用的動(dòng)物不同給藥途徑的注射量可參考表11-1。
表11-1 幾種動(dòng)物不同給藥途徑的常用注射量(毫升)
注射途徑 | 小鼠 | 大鼠 | 豚鼠 | 兔 | 狗 |
腹 腔 | 0.2-1.0 | 1-3 | 2-5 | 5-10 | 5-15 |
肌 肉 | 0.1-0.2 | 0.2-0.5 | 0.2-0.5 | 0.5-1.0 | 2-5 |
靜 脈 | 0.2-0.5 | 1-2 | 1-5 | 3-10 | 5-15 |
皮 下 | 0.1-0.5 | 0.5-1.0 | 0.5-2 | 1.0-3.0 | 3-10 |
(六)淋巴囊注射
蛙類常采用此法,因其皮下有數(shù)個(gè)淋巴囊,注入藥物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭背淋巴囊常作為蛙類給藥途徑。一般多選用腹部淋巴囊給藥。注射時(shí)將針頭從蛙大腿上端刺入,經(jīng)大腿肌層入腹壁肌層,再進(jìn)入腹壁皮下,即進(jìn)入淋巴囊,然后注入藥液。有時(shí)也可采用胸淋巴囊給藥。方法是將針頭刺入口腔,使穿過下頜肌層入胸淋巴囊內(nèi)注入藥液,一次最大注射量為1毫升。蛙全身分布為咽、胸、背、腹側(cè)、腹、大腿和腳等七個(gè)淋巴囊(圖11-17)。
圖11-17 蛙全身淋巴囊分布
(七)經(jīng)口給藥
在急性試驗(yàn)中,經(jīng)口給藥多用灌胃法,此法劑量準(zhǔn)確,適用于小白鼠、大白鼠、家兔等動(dòng)物。
1.小鼠、大鼠(或豚鼠)用輸血針頭或小號(hào)腰穿針頭,將其尖端斜面磨劑,用焊錫在針尖周圍焊一圓頭,注意勿堵塞針孔,即成灌胃針;亦可用燒成圓頭的硬質(zhì)玻璃毛細(xì)管或特制的塑料毛細(xì)秋,作為導(dǎo)管。灌胃時(shí)將針按在注射器上,吸入藥液。左手抓住鼠背部及頸部皮膚將動(dòng)物固定,右手持注射器,將灌胃針插入動(dòng)物口中,沿咽后壁徐徐插入食道。動(dòng)物應(yīng)固定成垂直體位,針插入時(shí)應(yīng)無阻力。若感到阻力或動(dòng)物掙扎時(shí),應(yīng)立即停止進(jìn)針或?qū)⑨槹纬,以兔損傷或穿破食道以及誤入氣管。
一般當(dāng)灌胃針插入小鼠3-4cm,大鼠或豚鼠4-6cm后可將藥物注入。常用的灌胃量小鼠為0.2-1ml,大鼠1-4ml,豚鼠為1-5ml。
2.狗、兔、貓、猴 灌胃時(shí),先將動(dòng)物固定,再將特制的擴(kuò)口器放入動(dòng)物口中,擴(kuò)口器之寬度可視動(dòng)物口腔大小而定,如狗的擴(kuò)口器可用木料制成長方形,長約10-15cm,粗細(xì)應(yīng)適合狗嘴,約2-3cm,中間粘一小孔,孔的直途為5-10cm。灌胃時(shí)將擴(kuò)口器放于上述動(dòng)物上下門牙之后,并用繩將它固定于嘴部,將帶有彈性的橡皮導(dǎo)管(如導(dǎo)尿管),經(jīng)擴(kuò)口器上的小圓孔插入,沿咽后壁而進(jìn)入食道,此時(shí)應(yīng)檢查導(dǎo)管是否正確插入食道,可將導(dǎo)管外口置于一盛水的燒杯中,如不發(fā)生氣泡,即認(rèn)為此導(dǎo)管是在食道中,未誤入氣管,即可將藥液灌入。
圖11-18 狗灌胃方法
經(jīng)我們大量實(shí)驗(yàn),給狗、兔等動(dòng)物灌胃時(shí),可不用擴(kuò)口器也能順利將藥液灌入胃內(nèi),狗灌胃時(shí),用12號(hào)灌胃管,左手抓住狗嘴,右手中指由右嘴角插入,摸到最后一對(duì)臼齒后的天然空隙,胃管由此空隙順食管方向不斷插入約20cm,可達(dá)胃內(nèi),將胃管另一端插入水中,如不出氣泡,表示確已進(jìn)入胃,而沒誤入氣管內(nèi),即可灌入。兔灌胃時(shí),將兔固定在木制固定盒內(nèi)左手虎口卡住并固定好兔嘴,右手取14號(hào)細(xì)導(dǎo)尿管,由右側(cè)唇裂避開門齒,將導(dǎo)管慢慢插入,如插管順利,動(dòng)物不掙扎,插入約15cm時(shí),即表示插入胃內(nèi),將藥液注入。
各種動(dòng)物一次灌胃能耐受的最大容積小鼠為0.5-1.0ml,大鼠4-7ml,豚鼠為4-7ml,家兔為80-150ml,狗為200-500ml。
(八)其它途徑給藥
1.呼吸道給藥 呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等癥狀存在藥物或毒氣,均需要通過動(dòng)物呼吸道給藥。如一般實(shí)驗(yàn)時(shí)給動(dòng)物乙醚作吸入麻醉,給動(dòng)物吸一定量的氨氣、二氧化碳等觀察呼吸、循環(huán)等變化;給動(dòng)物定期吸入一定量的SO2。鋸末煙霧等可造成慢性氣管炎動(dòng)物模型等;特別在毒物學(xué)實(shí)驗(yàn)中應(yīng)用更為廣泛。
2.皮膚給藥 為了鑒定藥物或毒物經(jīng)皮膚的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等,均需采用經(jīng)皮膚給藥方法。如家兔和豚鼠常采用背部一定面積的皮膚脫毛后,將一定藥液涂在皮膚上,藥液經(jīng)皮膚吸收。
3.脊髓腔內(nèi)給藥 此法主要用于椎管麻醉或抽取腦脊液。
家兔椎管內(nèi)注射方法:將家兔作自然俯臥式,盡量使其尾向腹側(cè)屈曲,用粗剪將第七腰椎周圍背毛剪去,用3%碘酊消毒,干后再用79%酒精將碘酒擦去。在兔背部髕骨脊連線之中點(diǎn)稍下方摸動(dòng)第七腰椎間隙(第七腰椎與第一骶骨椎之間),插入腰椎穿刺針頭。當(dāng)針到達(dá)椎管內(nèi)時(shí)(珠網(wǎng)膜下腔),可見到兔的后肢跳動(dòng),即證明穿刺針頭已進(jìn)入椎管。這時(shí)不要再向下刺,以兔損傷脊髓。固定好針頭,即可將藥物注入。
4.小腦延髓池給藥 此種給藥都是在動(dòng)物麻醉情況下進(jìn)行的。而且常采用大動(dòng)物如狗等,小動(dòng)物很少采用。將狗麻醉后,使狗頭盡量向胸部屈曲,用左手摸到其第一頸椎上方的凹陷(枕骨大孔),固定位置,右手取7號(hào)鈍針頭(將針頭尖端麻鈍),由此凹陷的正中線上,順平行狗的方向,小心地刺入小腦延髓池。當(dāng)針頭正確刺入小腦延髓池時(shí),注射者會(huì)感到針頭再向前穿時(shí)無阻力,同時(shí)可以聽到很輕的“咔嚓”一聲,即表示針頭已穿過硬腦膜進(jìn)入小腦延髓池,而且可抽出清亮的腦脊液,注射藥物前,先抽出一些腦脊液,抽取量根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要注入多少藥液決定,即注入多少抽取多少,以保持原來腦脊髓腔里的壓力(圖11-19)。
圖11-19 狗小腦延髓池給藥
5.腦內(nèi)給藥 此法常用于微生物學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn),將病原體等接種于被檢動(dòng)物腦內(nèi),然后觀察接種后的各種變化。小鼠腦內(nèi)給藥時(shí),選套有塑料管、針尖露出2mm深的5(1/2)針頭,由鼠正中額部刺入腦內(nèi),注入藥物或接種物。給豚鼠、兔、狗等進(jìn)行腦內(nèi)注射時(shí),須先用穿顱鋼針穿透顱骨,再用注射器針頭刺入腦部,再徐徐注入被檢物。注射速度一定要慢,避免引起顱內(nèi)壓急驟升高。
6.直腸內(nèi)給藥 此種給藥方法常用于動(dòng)物麻醉。家兔直腸內(nèi)給藥時(shí),取灌腸用的膠皮管或用14號(hào)導(dǎo)尿管代替。在膠皮管或?qū)蚬茴^上涂上凡士林,由助手使兔蹲臥于桌上,以左臂及左腋輕輕按住兔頭及前肢,以左手拉住兔尾,露出肛門,并用右手輕握后肢,實(shí)驗(yàn)者將橡皮管插入家兔肛門內(nèi),濃度約7~9cm,如為雌性動(dòng)物,注意勿誤插入陰道(肛門緊接尾根)。橡皮管插好后,將注射器與橡皮管套緊,即可灌注藥液。
7.關(guān)節(jié)腔內(nèi)給藥 此種方法常用于關(guān)節(jié)炎的動(dòng)物模型復(fù)制。兔給藥時(shí),將兔仰臥固定于兔固定臺(tái)上,剪去關(guān)節(jié)部被毛,用碘酒或酒精消毒,然后用手從下方和兩旁將關(guān)節(jié)固定,把皮膚稍移向一側(cè),在臏韌帶附著點(diǎn)處上方約0.5厘米處進(jìn)針。針頭從上前方向下后方傾斜刺進(jìn),直至針頭遇阻力變小,然后針頭稍后退,以垂直方向推到關(guān)節(jié)腔中。針頭進(jìn)入關(guān)節(jié)腔時(shí),通常可有好象刺破薄膜的感覺,表示針頭已進(jìn)入膝關(guān)節(jié)腔內(nèi),即可注入藥液。動(dòng)物最大給藥量可參考表11-2。
表11-2 常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的最大給藥量和使用針頭規(guī)格
動(dòng)物名稱 | 項(xiàng) 目 | 灌 胃 | 皮下注射 | 肌肉注射 | 腹腔注射 | 靜脈注射 |
小白鼠 | 最大給藥量 使用針頭 | 1ml 9(鈍頭) | 0.4ml 5(1/2) | 0.4ml 5(1/2) | 1ml 5(1/2) | 0.8ml 4 |
大白鼠 | 最大給藥量 使用針頭 | 1ml 靜脈切 開 針 | 1ml 6 | 0.4ml 6 | 2ml 6 | 4ml 5 |
鼠 | 最大給藥量 使用針頭 | 3ml 靜脈切 開 針 | 1ml 6(1/2) | 0.5ml 6(1/2) | 4ml 7 | 5ml 5 |
兔 | 最大給藥量 使用針頭 | 20ml 10號(hào) 導(dǎo)尿管 | 2ml 6(1/2) | 2ml 6(1/2) | 5ml 7 | 10ml 6 |
貓 | 最大給藥量使用針頭 | 20ml 10號(hào) 導(dǎo)尿管 | 20ml 7 | 2ml 7 | 5ml 7 | 10ml 6 |
蛙 | 淋巴囊注射 最大注射量 1ml/只 |
(一)動(dòng)物給藥量的確定
在觀察一個(gè)藥物的作用時(shí),應(yīng)該給動(dòng)物多在的劑量是實(shí)驗(yàn)開始時(shí)應(yīng)確定的一個(gè)重要問題。劑量太小,作用不明顯,劑量太大,又可能引起動(dòng)物中毒致死,可以按下述方法確定劑量:
1.先用小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量,然后用小于中毒量的劑量,或取致死量的若干分之一為應(yīng)用劑量,一般可取1/10-1/5。
2.植物藥粗制劑的劑量多按生藥折算。
3.化學(xué)藥品可參考化學(xué)結(jié)構(gòu)相似的已知藥物,特別是化學(xué)結(jié)構(gòu)和作用都相似的藥物的劑量。
4.確定劑量后,如第一次實(shí)驗(yàn)的作用不明顯,動(dòng)物也沒有中毒的表現(xiàn)(體重下降、精神不振、活動(dòng)減少或其他癥狀),可以加大劑量再次實(shí)驗(yàn)。如出現(xiàn)中毒現(xiàn)象,作用也明顯,則應(yīng)降低劑量再次實(shí)驗(yàn)。在一般情況下,在適宜的劑量范圍內(nèi),藥物的作用常隨劑量的加大而增強(qiáng)。所以有條件時(shí),最好同時(shí)用幾個(gè)劑量作實(shí)驗(yàn),以便迅速獲得關(guān)于藥物作用的較完整的資料。如實(shí)驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn)劑量與作用強(qiáng)度之間毫無規(guī)律時(shí),則更應(yīng)慎重分析。
5.用大動(dòng)物進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時(shí),開始的劑量可采用給鼠類劑量的十五分之一~二分之一,以后可根據(jù)動(dòng)物的反應(yīng)調(diào)整劑量。
6.確定動(dòng)物給藥劑量時(shí),要考慮給藥動(dòng)物的年齡大小和體質(zhì)強(qiáng)弱。一般說確定的給藥劑量是指成年動(dòng)物的,如是幼小動(dòng)物,劑量應(yīng)減少。如以狗為例:6個(gè)月以上的狗給藥量為1份時(shí),3-6個(gè)月的給1/2份,45-89日1/4份,20-44日的給1/8份,10-19日的給1/16份。
7.確定動(dòng)物給藥劑量時(shí),要考慮因給藥途徑不同,所用劑量也不同,以口服量為100時(shí),灌腸量應(yīng)為100-200,皮下注射量30-50,肌肉注射量為25-30,靜脈注射量為25。
(二)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物用藥量的計(jì)算方法
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)所用的藥物劑量,一般按mg/kg體重或g/kg體重計(jì)算,應(yīng)用時(shí)須從已知藥液的濃度換算出相當(dāng)于每kg體重應(yīng)注射的藥液量(ml數(shù)),以便給藥。
例1:計(jì)算給體重1.8kg的家兔,靜脈注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉,按每kg體重1g的劑量注射,應(yīng)注射多少ml?
計(jì)算方法:兔每kg體重需注射1g,注射液為20%,則氨基甲酸乙酯溶液的注射量應(yīng)為5ml/kg體重,現(xiàn)在兔體重為1.8kg,應(yīng)注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。
例2:計(jì)算給體重23g的小白鼠,注射鹽酸嗎啡15mg/kg重,溶液濃度為0.1%,應(yīng)注射多少ml?
計(jì)算方法:小白鼠每kg體重需嗎啡的量為15mg,則0.1%鹽酸嗎啡溶液的注射量應(yīng)為15ml/kg體重,現(xiàn)小白鼠體重為23g,應(yīng)注射0.1%鹽酸嗎啡溶液的用量=15×0.023=0.345ml。
(三)人與動(dòng)物及各類動(dòng)物間藥物劑量的換算方法
1.人與動(dòng)物用藥量換算 人與動(dòng)物對(duì)同一藥物的耐受性是相差很大的。一般說來,動(dòng)物的耐受性要比人大,也就是單位體重的用藥理動(dòng)物比人要大。人的各種藥物的用量在很多書上可以查得,但動(dòng)物用藥量可查的書較少,而且動(dòng)物用的藥物種類遠(yuǎn)不如人用的那么多。因此,必須將人的用藥量換算成動(dòng)物的用藥量。一般可按下列比例換算:人用藥量為1,小白鼠、大白鼠為25-50,兔、豚鼠為15-20,狗、貓為5-10。
此外,可以采用人與動(dòng)物的體表面積計(jì)算法來換算:
(1)人體體表面積計(jì)算法 計(jì)算我國人的體表面積,一般認(rèn)為許文生氏公式(中國生理學(xué)雜志12:327,1937)尚較適用,即:
體表面積(m2)=0.0061×身高(cm)+0.0128×體重(kg)-0.1529
例:某人身高168cm,體重55kg,試計(jì)算其體表面積。
解:0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2
(2)動(dòng)物的體表面積計(jì)算法 有許多種,在需要由體重推算體表面積時(shí),一般認(rèn)為Meeh-Rubner氏公式尚較適用,即:
式中的K為一常數(shù),隨動(dòng)物種類而不同:小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、貓9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家報(bào)導(dǎo)略有出入)。應(yīng)當(dāng)指出,這樣計(jì)算出來的表面積還是一種粗略的估計(jì)值,不一定完全符合于每個(gè)動(dòng)物的實(shí)測(cè)數(shù)值。
例:試計(jì)算體重1.50kg家兔的體表面積。
2.人及不同種類動(dòng)物之間藥物劑量的換算
(1)直接計(jì)算法 即按:
例:某利尿藥大白鼠灌給藥時(shí)的劑量為250mg/kg,試粗略估計(jì)狗灌胃給藥時(shí)可以試用的劑量。
解:實(shí)驗(yàn)用大白鼠的體重一般在200g左右,其體表面積(A)為:
250mg/kg的劑量如改以mg/m2表示,即為:
實(shí)驗(yàn)用狗的體重一般在10kg左右,其體表面積(A)為:
(2)按mg/kg折算mg/m2轉(zhuǎn)換因子計(jì)算
例:同上
解:按
計(jì)算出狗的適當(dāng)試用劑量。mg/kg的相應(yīng)轉(zhuǎn)移因子可由表11-3查得。(即為按mg/m2計(jì)算的劑量)。
(3)按每kg體重占有體重表面積相對(duì)比值計(jì)算
各種動(dòng)物的“每kg體重占有體表面積相對(duì)比值(簡(jiǎn)稱體表面積比例比值)”見表11-3。
(4)按人和動(dòng)物間按體表面積折算的等效劑量比值表計(jì)算
見表11-4,12kg狗的體表面積為200g大白鼠的17.8倍。該藥大白鼠的劑量為250mg/kg,200g的大白鼠需給藥250×0.2=50mg。
于是
(狗的適當(dāng)試用劑量)。
表11-3 進(jìn)行不同種類動(dòng)物間劑量換算時(shí)的常用數(shù)據(jù)
動(dòng)物種類 | Meeh-Rubner公式的K值 | 體重(kg) | 體表面積(m2) | Mg/kg-mg/m2轉(zhuǎn)移因子 | 每kg體重占有體面積相對(duì)比值 | |
小白鼠 | 9.1 | 0.018 0.02 0.022 0.024 | 0.0066 0.0067 0.0071 0.0076 | 2.9 3.0 3.1 3.2 | 粗略值3 | 1.0 (0.02kg) |
大白鼠 | 9.1 | 0.10 0.15 0.20 0.25 | 0.0196 0.0257 0.0311 0.0761 | 5.1 5.8 6.4 6.9 | 粗略值6 | 0.47 (0.20kg) |
豚鼠 | 9.8 | 0.30 0.40 0.50 0.60 | 0.0439 0.0532 0.0617 0.0697 | 6.8 7.5 8.1 8.6 | 粗略值8 | 0.40 (0.40kg) |
家兔 | 10.1 | 1.50 2.00 2.50 | 0.1323 0.1608 0.1860 | 11.3 12.4 13.4 | 粗略值12 | 0.24 (2.0kg) |
貓 | 9.0 | 2.00 2.50 3.00 | 0.1571 0.1324 0.2059 | 12.7 13.7 14.6 | 粗略值14 | 0.22 (2.5kg) |
狗 | 11.2 | 5.00 10.00 15.00 | 0.3275 0.5199 0.6812 | 15.3 19.2 22.0 | 粗略值19 | 0.16 (10.0kg) |
猴 | 11.8 | 2.00 3.00 4.00 | 0.1878 0.2455 0.2973 | 10.7 12.2 13.5 | 粗略值12 | 0.24 (3.0kg) |
人 | 10.6 | 40.00 50.00 60.00 | 1.2398 1.4386 1.6246 | 32.2 34.8 36.9 | 粗略值35 | 0.08 (50.0kg) |
表11-4 人和動(dòng)物間按體表面積折算的等效劑量比值表
小白鼠(20g) | 大白鼠(200g) | 豚鼠(400g) | 家兔(1.5kg) | 貓(2.0kg) | 猴(4.0kg) | 狗(12kg) | 人(70kg) | |
小白鼠(20g) | 1.0 | 7.0 | 12.25 | 27.8 | 29.7 | 64.1 | 124.2 | 378.9 |
大白鼠(200g) | 0.14 | 1.0 | 1.74 | 3.9 | 4.2 | 9.2 | 17.8 | 56.0 |
豚鼠(400g) | 0.08 | 0.57 | 1.0 | 2.25 | 2.4 | 5.2 | 4.2 | 31.5 |
家兔(1.5kg) | 0.04 | 0.25 | 0.44 | 1.0 | 1.08 | 2.4 | 4.5 | 14.2 |
貓(2.0kg) | 0.03 | 0.23 | 0.41 | 0.92 | 1.0 | 2.2 | 4.1 | 13.0 |
猴(4.0kg) | 0.016 | 0.11 | 0.19 | 0.42 | 0.45 | 1.0 | 1.9 | 6.1 |
狗(12kg) | 0.008 | 0.06 | 0.10 | 0.22 | 0.23 | 0.52 | 1.0 | 8.1 |
人(70kg) | 0.0026 | 0.018 | 0.031 | 0.07 | 0.078 | 0.16 | 0.82 | 1.0 |
(5)按人與各種動(dòng)物以及各種動(dòng)物之間用藥劑量換算
已知A種動(dòng)物每kg體重用藥量,欲估算B種動(dòng)物每kg體重用藥劑量時(shí),可先查第422頁表11-5,找出折算系數(shù)(W),再按下式計(jì)算:
B種動(dòng)物的劑量(mg/kg)=W×A種動(dòng)物的劑量(mg/kg)
例如,已知某藥對(duì)小鼠的最大耐受量為20mg/kg(20g小鼠用0.4mg),需折算為家兔量。查A種動(dòng)物為小鼠,B種動(dòng)物為兔,交叉點(diǎn)為折算系數(shù)W=0.37,故家兔用藥量為0.37×20mg/kg=7.4mg/kg,1.5kg家兔用藥量為11.1mg。
表11-5 動(dòng)物與人體的每公斤體重劑量折算系數(shù)表
折算系數(shù)W | A 組 動(dòng) 物 或 成 人 | |||||||
小鼠 0.02kg | 大鼠 0.2kg | 豚鼠 0.4kg | 兔 1.5kg | 貓 2kg | 犬 12kg | 成人 60kg | ||
B 種動(dòng)物或成人 | 小鼠20g | 1.0 | 1.6 | 1.6 | 2.7 | 3.2 | 4.8 | 9.01 |
大鼠0.2kg | 0.7 | 1.0 | 1.14 | 1.88 | 2.3 | 3.6 | 6.25 | |
豚鼠0.4kg | 0.61 | 0.87 | 1.0 | 1.65 | 2.05 | 3.0 | 5.55 | |
兔1.5kg | 0.37 | 0.52 | 0.6 | 1.0 | 1.23 | 1.76 | 2.30 | |
貓2.0kg | 0.30 | 0.42 | 0.48 | 0.81 | 1.0 | 1.44 | 2.70 | |
犬12kg | 0.21 | 0.28 | 0.34 | 0.56 | .068 | 1.0 | 1.88 | |
成人60kg | 0.11 | 0.16 | 0.18 | 0.304 | 0.371 | 0.531 | 1.0 |
在一些動(dòng)物實(shí)驗(yàn),特別是手術(shù)等實(shí)驗(yàn),為減少動(dòng)物的掙扎和保持其安靜,并便于操作,常對(duì)動(dòng)物采用必要的麻醉。由于動(dòng)物種屬間的差異等情況,所采用的麻醉方法和選用的麻醉劑亦有不同。
(一)常用的麻醉劑
動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中常用的麻醉劑分為三類,即揮發(fā)性麻醉劑、非揮發(fā)性麻醉劑和中藥麻醉劑。
1.揮發(fā)性麻醉劑 這類麻藥包括乙醚、氯仿等。乙醚吸入麻醉適用于各種動(dòng)物,其麻醉量和致死量差距大,所發(fā)安全度亦大,動(dòng)物麻醉深度容易掌握,而且麻后蘇醒較快。其缺點(diǎn)是對(duì)局部刺激作用大,可引起上呼吸道粘膜液體分泌增多,再通過神經(jīng)反射可影響呼吸、血壓和心跳活動(dòng),并且容易引起窒息,故在乙醚吸入麻醚時(shí)必需有人照看,以防麻醉過深而出現(xiàn)上情況。
2.非揮發(fā)性麻醉劑 這類麻醉劑種類較多,包括苯巴比妥鈉、戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉等巴比妥類的衍生物,氨基甲酸乙脂和水合氯醛。這些麻醉劑使用方便,一次給藥可維持較長的麻醉時(shí)間,麻醉過程較平衡,動(dòng)物無明顯掙扎現(xiàn)象。但缺點(diǎn)是蘇醒較慢。
3.中藥麻醉劑 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)時(shí)有時(shí)也用到象洋金花和氫溴酸東莨菪堿等中藥麻醉劑,但由于其作用不夠穩(wěn)定,而且常需加佐劑麻醉效果才能理想,故在使用過程中不能得到普及,因而,多數(shù)實(shí)驗(yàn)室不選用這類麻醉劑進(jìn)行麻醉。
(二)動(dòng)物的麻醉方法
1.全身麻醉
(1)吸入法 用一塊圓玻璃板和一個(gè)鐘罩或一個(gè)密閉的玻璃箱作為揮發(fā)性麻醉劑的容器,多選用乙醚作麻藥。麻醉時(shí)用幾個(gè)棉球,將乙醚倒可其中,迅速轉(zhuǎn)入鐘罩或箱內(nèi),讓其揮發(fā),然后把待麻醉動(dòng)物投入,約隔4-6分鐘即可麻醉,麻醉后應(yīng)立即取出,并準(zhǔn)備一個(gè)蘸有乙醚的棉球小燒杯,在動(dòng)物麻醚變淺時(shí)給套在鼻上使其補(bǔ)吸麻藥。本法最適于大、小鼠的短期操作性實(shí)驗(yàn)的麻醉,當(dāng)然也可用于較大的動(dòng)物只是要求有麻醉口罩或較大的玻璃箱罷了。由于乙醚燃點(diǎn)很低,遇火極易燃燒,所以在使用時(shí),一定要遠(yuǎn)離炎源。
(2)腹腔和靜脈給藥麻醉法
非揮發(fā)性和中藥麻醉劑均可用作腹腔和靜脈注射麻醉,操作簡(jiǎn)便,是實(shí)驗(yàn)室最常采用的方法之一。腹腔給藥麻醉多用于大小鼠和豚鼠,較大的動(dòng)物如兔、狗等則多用靜脈給藥進(jìn)行麻醉。由于各麻醉劑的作用長短以及毒性的差別。所以在腹腔和靜脈麻醉時(shí),一定控制藥物的濃度和注射量(見表11-6)。
表11-6 常用麻醉劑的用法及劑量
麻 醉 劑 | 動(dòng) 物 | 給藥方法 | 劑 量(mg/kg) | 常用濃度% | 維 持 時(shí) 間 |
戊巴比妥納 | 狗、兔 | 靜脈 | 30 | 3 | 2-4小時(shí)中途加上1/5量,可維持1小時(shí)以上,麻醉力強(qiáng),易抑制呼吸。 |
腹腔 | 40-50 | 3 | |||
大、小鼠、豚鼠 | 腹腔 | 40-50 | 2 | ||
硫噴妥納 | 狗、兔 | 靜脈 | 15-20 | 2 | 15-30分鐘,麻醉力強(qiáng),宜緩慢注射。 |
大白鼠 | 腹腔 | 40 | 1 | ||
小白鼠 | 腹腔 | 15-20 | 1 | ||
氯 醛 糖 | 兔 | 靜脈 | 80-100 | 2 | 3-4小時(shí),誘導(dǎo)期不明顯 |
大白鼠 | 腹腔 | 50 | 2 | ||
烏 拉 坦 | 兔 | 靜脈 | 750-1000 | 30 | 2-4小時(shí),毒性小,主要適用小動(dòng)物的麻醉。 |
大、小白鼠 | 皮下或肌肉 | 800-1000 | 20 | ||
蛙 | 淋巴囊注射 | 0.1ml/100g | 20-25 | ||
蟾蜍 | 淋巴囊注射 | 1ml/100g | 10 |
2.局部麻醉
⑴貓的局部麻醉一般應(yīng)用0.5-1.0%鹽酸普魯卡因注射。粘膜表面麻醉宜用2%鹽酸可卡因。
⑵兔在眼球手術(shù)時(shí),可于結(jié)膜囊滴入0.02%鹽酸可卡因溶液,數(shù)秒鐘即可出現(xiàn)麻醉。
⑶狗的局部麻醉用0.5-1%鹽酸普魯卡因注射。眼鼻、咽喉表面麻醉可用2%鹽酸可卡因。
3.麻醉注意事項(xiàng)
⑴靜脈注射必須緩慢,同時(shí)觀察肌肉緊張性、角膜反射和對(duì)皮膚夾捏的反應(yīng),當(dāng)這些活動(dòng)明顯減弱或消失時(shí),立即停止注射。配制的藥液濃度要適中,不可過高,以兔麻醉過急;但也不能過低,以減少注入溶液的體積。
⑵麻醉時(shí)需注意保溫。麻醉期間,動(dòng)物的體溫調(diào)節(jié)機(jī)能往往受到抑制,出現(xiàn)體溫下降,可影響實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性。此時(shí)常需采取保溫措施。保溫的方法有,實(shí)驗(yàn)桌內(nèi)裝燈,電褥,臺(tái)燈照射等。無論用哪種方法加溫都應(yīng)根據(jù)動(dòng)物的肛門體溫而定。常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物正常體溫:貓為38.6℃±1.0℃,兔為38.4℃±1.0℃,大鼠為39.3℃±0.5℃。
⑶作慢性實(shí)驗(yàn)時(shí),在寒冷冬季,麻醉劑在注射前應(yīng)加熱至動(dòng)物體溫水平。
實(shí)驗(yàn)研究中,經(jīng)常要采集實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的血液進(jìn)行常規(guī)檢查或某些生物化學(xué)分析,故必須掌握血液的正確采集、分離和保存的操作技術(shù)。
采血方法的選擇,主要決定于實(shí)驗(yàn)的目的所需血量以及動(dòng)物種類。凡用血量較少的檢驗(yàn)如紅、白細(xì)胞計(jì)數(shù)、血紅蛋白的測(cè)定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破組織取毛細(xì)血管的血。當(dāng)需血量較多時(shí)可作靜脈采血。靜脈采血時(shí),若需反復(fù)多次,應(yīng)自遠(yuǎn)離心臟端開始,以免發(fā)生栓塞而影響整條靜脈。例如,研究毒物對(duì)肺功能的影響、血液酸堿平衡、水鹽代謝紊亂,需要比較動(dòng)、動(dòng)脈血氧分壓、二氧化碳分壓和血液pH值以及K+、Na+、CI-離子濃度,必須采取動(dòng)脈血液。
采血時(shí)要注意:⑴采血場(chǎng)所有充足的光線;室溫夏季最好保持在25-28℃,冬季,15-20℃為宜;⑵采血用具有采用部位一般需要進(jìn)行消毒;⑶采血用的注射器和試管必須保持清潔干燥;⑷若需抗凝全血,在注射器或試管內(nèi)需預(yù)先加入抗凝劑,F(xiàn)將采用血方法按動(dòng)物和部位分別加以介紹。
不同動(dòng)物采血部位與采血量的關(guān)系可參考表11-7。
表11-7 不同動(dòng)物采血部位與采血量的關(guān)系
采血量 | 采血部位 | 動(dòng)物品種 |
取少量血 | 尾靜脈 耳靜脈 眼底靜脈叢 舌下靜脈 腹壁靜脈 冠、腳蹼皮下靜脈 | 大鼠、小鼠 兔、狗、貓、豬、山羊、綿羊 兔、大鼠、小鼠 兔 青蛙、蟾蜍 雞、鴨、鵝 |
取中量血 | 后肢外側(cè)皮下小隱靜脈 前肢內(nèi)側(cè)皮下頭靜脈 耳中央動(dòng)脈 頸靜脈 心臟 斷頭 翼下靜脈 頸動(dòng)脈 | 狗、猴、貓 狗、猴、貓 兔 狗、貓、兔 豚鼠、大鼠、小鼠 大鼠、小鼠 雞、鴨、鴿、鵝 雞、鴨、鴿、鵝 |
取大量血 | 股動(dòng)脈、頸動(dòng)脈 心臟 頸靜脈 摘眼球 | 狗、猴、貓、兔 狗、猴、貓、兔 馬、牛、山羊、綿羊 大鼠、小鼠 |
常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的最大安全采血量與最小的致死采用血量,見表11-8。
表11-8 常用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的最大安全采血量與最小致死采血量
動(dòng)物品種 | 最大安全采血量(ml) | 最小致死采血量(ml) |
小 鼠 | 0.2 | 0.3 |
大 鼠 | 1 | 2 |
豚 鼠 | 5 | 10 |
兔 | 10 | 40 |
狼 狗 | 100 | 500 |
獵 狗 | 50 | 200 |
猴 | 15 | 60 |
(一)小鼠、大鼠采血法
1.割(剪)尾采血
當(dāng)所需血量很少時(shí)采用本法。固定動(dòng)物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的溫水中數(shù)分鐘,使尾部血管充盈。再將尾擦干,用銳器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm,讓血液自由滴入盛器或用血紅蛋白吸管吸取,采血結(jié)束,傷口消毒并壓迫止血。也可在尾部作一橫切口,割破尾動(dòng)脈或靜脈,收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml,大鼠0.3~0.5ml。
2.鼠尾刺血法
大鼠用血量不多時(shí)(僅做白細(xì)胞計(jì)數(shù)或血紅蛋白檢查),可采用本法。先將鼠尾用溫水擦拭,再用酒精消毒和擦拭,使鼠尾充血。用7號(hào)或8號(hào)注射針頭,刺入鼠尾靜脈,拔出針頭時(shí)即有血滴出,一次可采集10~50mm3。如果長期反復(fù)取血,應(yīng)先靠近鼠尾末端穿刺,以后再逐漸向近心端穿刺。
3.眼眶靜脈叢采血 采血者的左手拇食兩指從背部較緊地握住小鼠或大鼠的頸部(大鼠采血需帶上紗手套),應(yīng)防止動(dòng)物窒息。當(dāng)取血時(shí)左手拇指及食指輕輕壓迫動(dòng)物的頸部?jī)蓚?cè),使眶后靜脈叢充血。右手持續(xù)接7號(hào)針頭的1ml注射器或長頸(3~4cm)硬質(zhì)玻璃滴管(毛細(xì)管內(nèi)徑0.5-1.0mm),使采血器與鼠面成45℃的夾角,由眼內(nèi)角刺入,針頭斜面先向眼球,刺入后再轉(zhuǎn)180度使斜面對(duì)著眼眶后界。刺入濃度,小鼠約2~3mm,大鼠約4~5mm。當(dāng)感到有阻力時(shí)即停止推進(jìn),同時(shí),將針退出約0.1-0.5mm,邊退邊抽。若穿刺適當(dāng)血液能自然流入毛細(xì)管中,當(dāng)?shù)玫剿璧难亢,即除去加于頸部的壓力,同時(shí),將采血器拔出,以防止術(shù)后穿刺孔出血。
若技術(shù)熟練,用本法短期內(nèi)可重復(fù)采血均無多大困難。左右兩眼輪換更好。體重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml;體重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml,可適用于某些生物化學(xué)項(xiàng)目的檢驗(yàn)。
4.斷頭取血
采血者的左手拇指和食指以背部較緊地握住大(小)鼠的頸部皮膚,并作動(dòng)物頭朝下傾的姿勢(shì)。右手用剪刀猛剪鼠頸,約1/2-4/5的頸部前剪斷,讓血自由滴入盛器。小鼠可采用約0.8~1.2ml;大鼠約5-10ml。
5.心臟采血
鼠類的心臟較小,且心率較快,心臟采血比較困難,故少用;铙w采血方法與豚鼠相同。若做開胸一次死亡采血,先將動(dòng)物作深麻醉,打開胸腔,暴露心臟,用針頭刺入右心室,吸取血液。小鼠約0.5-0.6ml;大鼠約0.8-1.2ml。
6.頸動(dòng)靜脈采血
先將動(dòng)物仰位固定,切開頸部皮膚,分離皮下結(jié)締組織,使頸靜脈充分暴露,可用注射器吸出血液。在氣管兩側(cè)分離出頸動(dòng)脈,離心端結(jié)扎,向心端剪口將血滴入試管內(nèi)。
7.腹主動(dòng)脈采血
最好先將動(dòng)物麻醉,仰臥固定在手術(shù)架上,從腹正中線皮膚切開腹腔,使腹主動(dòng)脈清楚暴露。用注射器吸出血液,防止溶血;蛴脽o齒鑷子剝離結(jié)締組織,夾住動(dòng)脈近心端,用尖頭手術(shù)剪刀,剪斷動(dòng)脈,使血液噴入盛器。
8.股動(dòng)(靜)脈采血
先由助手握住動(dòng)物,采血者左手拉直動(dòng)物下肢,使靜脈充盈;蛘咭圆珓(dòng)為指標(biāo),右手用注射器刺入血管。體重15-20g 小鼠采血約0.2-0.8ml,大鼠約0.4-0.6ml。
(二)豚鼠采血法
1.耳緣剪口采血
將耳消毒后,用銳器(刀或刀片)割破耳緣,在切口邊緣涂抹20%檸檬酸鈉溶液,阻止血凝,則血可自切口自動(dòng)流出,進(jìn)入盛器。操作時(shí),使耳充血效果較好。此法能采血0.5ml左右。
2.心臟采血
取血前應(yīng)探明心臟搏動(dòng)最強(qiáng)部位,通常在胸骨左緣的正中,選心跳最顯的部位作穿刺。針頭宜稍細(xì)長些,以免發(fā)生手術(shù)后穿刺孔出血,其操作手法詳見兔心臟采血。因豚鼠身體較小,一般可不必將動(dòng)物固定在解剖臺(tái)上,而可由助手握住前后肢進(jìn)行采血即可。成年豚鼠每周采血應(yīng)不超過10ml為宜。
3.肌動(dòng)脈采血
將動(dòng)脈仰位固定在手術(shù)臺(tái)上,剪去腹股溝區(qū)的毛,麻醉后,局部用碘酒消毒。切開長約2-3cm的皮膚,使股動(dòng)脈暴露及分離。然后,用鑷子提起股動(dòng)脈,遠(yuǎn)端結(jié)扎,近端用止血鉗夾住,在動(dòng)脈中央剪一小孔,用無菌玻璃小導(dǎo)管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入,放開止血鉗,血液即導(dǎo)管口流出。一次可采血10-20ml。
4.背中足靜脈取血
助手固定動(dòng)物,將其右或左右膝關(guān)節(jié)伸直提到術(shù)者面前。術(shù)者將動(dòng)物腳背面用酒精消毒,找出背中足靜脈后,以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手拿的注射針刺入靜脈。拔針后立即出血,呈半球狀隆起。采血后,用紗布或脫脂棉壓迫止血。反復(fù)采血時(shí),兩后肢交替使用。
(三)兔采血法
1.耳靜脈采血
本法為最常用的取血法之一,常作多次反復(fù)取血用,因此,保護(hù)耳緣靜脈,防止發(fā)生栓塞特別重要。
將兔放入僅露出頭部及兩耳的固定盒中,或由助手以手扶住。選耳靜脈清晰的耳朵,將耳靜脈部位的毛拔去,用75%酒精局部消毒,待干。用手指輕輕摩擦兔耳,使靜脈擴(kuò)張,用連有5(1/2)號(hào)針頭的注射器在耳緣靜脈末端刺破血管待血液漏出取血或?qū)⑨橆^逆血流方向刺入耳緣靜脈取血,取血完畢用棉球壓迫止血,此種采血法一次最多可采血5-10ml。
2.耳中央動(dòng)脈采血
將兔置于兔固定筒內(nèi),在兔耳的中央有一條較粗、顏色較鮮紅的中央動(dòng)脈,用左手固定兔耳,右手取注射器,在中央動(dòng)脈的末端,沿著動(dòng)脈平行地向心方向刺入動(dòng)脈,即可見動(dòng)脈血進(jìn)入針筒,取血完畢后注意止血。此法一次抽血可達(dá)15ml。但抽血時(shí)應(yīng)注意,由于兔耳中央動(dòng)脈容易發(fā)生痙攣性收縮,因此抽血前,必須先讓兔耳充分充血,當(dāng)動(dòng)脈擴(kuò)張,未發(fā)生痙攣性收縮之前立即進(jìn)行抽血,如果等待時(shí)間過長,動(dòng)脈經(jīng)常會(huì)發(fā)生較長時(shí)間的痙攣性收縮。取血用的針頭一般用6號(hào)針頭,不要太細(xì)。針刺部位從中央動(dòng)脈末端開始。不要在近耳根部取血,因耳根部軟組織厚,血管位置略深,易刺透血管造成皮下出血。
3.心臟取血
將家兔仰臥固定,在第三肋間胸骨左緣3毫米處注射針垂直刺入心臟,血液隨即進(jìn)入針管。注意事項(xiàng)有:⑴動(dòng)作宜迅速,以縮短在心臟內(nèi)的留針時(shí)間和防止血液凝固;⑵如針頭已進(jìn)入心臟但抽不出血時(shí),應(yīng)將針頭稍微后退一點(diǎn)。⑶在胸腔內(nèi)針頭不應(yīng)左右擺動(dòng)以防止傷及心,肺、一次可取血20-25ml。
4.后肢脛部皮下靜脈取血
將兔仰臥固定于兔固定板上,或由一人將兔固定好。拔去脛部被毛,在脛部上端股部扎以橡皮管,則在脛部外側(cè)淺表皮下,可清楚見到皮下靜脈。用左手兩指固定好靜脈,右手取帶有5(1/2)號(hào)針頭的注射器內(nèi)皮下靜脈平行方向刺入血管,抽一下針?biāo),如血進(jìn)入注射器,表示針頭已刺入血管,即可取血。一次可取2~5ml。取完后必須用棉球壓迫取血部位止血,時(shí)間要略長些,因此處不易止血。如止血不妥,可造成皮下血腫,影響連續(xù)多次取血。
5.股靜脈、頸靜脈取血
先作股靜脈和頸靜脈暴露分離手術(shù)
⑴股靜脈取血 注射器平行于血管,從股靜脈下端向心方向刺入,徐徐抽動(dòng)針?biāo)纯扇⊙3檠戤吅笠⒁庵寡。股靜脈較易止血,用于紗布輕壓取血部位即可。若連續(xù)多次取血,取血部位宜盡量選擇靠離心端。
⑵外頸靜脈取血 注射器由近心端(距頸靜脈分支2-3厘米處)向頭側(cè)端順血管平等方向刺入,使注射針一直引深至頸靜脈分支叉處,即可取血。此處血管較粗,很容易取血,取血量也較多,一次可取10ml以上。取血完畢,拔出針頭,用干紗布輕輕壓迫取血部位也易止血。兔急性實(shí)驗(yàn)的靜脈取血,用此法較方便。
(四)狗、貓采血法
1.后肢外側(cè)小隱靜脈和前肢內(nèi)側(cè)下頭靜脈采血
此法最常用,且方便。后肢外側(cè)小隱靜脈在后肢脛部下1/3的外側(cè)淺表的皮下,由前側(cè)方向后行走。抽血前,將狗固定在狗架上或使狗側(cè)臥,由助手將狗固定好。將抽血部位的毛剪去,碘酒一酒精消毒皮膚。采血者左手拇指和食指握緊剪毛區(qū)上部,使下肢靜脈充盈,右手用連有6號(hào)或7號(hào)針頭的消毒器迅速穿刺入靜脈,左手放松將針固定,以適當(dāng)速度抽血(以無氣泡為宜)。或?qū)⒛z皮帶綁在狗股部,或由助手握緊股部,即可,若僅需少量血液,可以不用注射器抽取,只需用針頭直接刺入靜脈,待血從針孔自然滴出,放入盛器或作涂片。
采集前肢內(nèi)側(cè)皮下的頭靜脈血時(shí),操作方法基本與上述相同。一只狗一般采10-20ml血并不困難。
2.股動(dòng)脈采血
本法為采取狗動(dòng)脈血最常用的方法。操作也較簡(jiǎn)便。稍加以訓(xùn)練的狗,在清醒狀態(tài)下將狗臥位固定于狗解剖臺(tái)上。伸展后肢向外伸直,暴露腹肥肉溝三角動(dòng)脈搏動(dòng)的部位,剪去毛。用碘酒消毒。左手中指、食指探摸股動(dòng)脈跳動(dòng)部位,并固定好血管,右手取連有5(1/2)號(hào)針頭的注射器,針頭由動(dòng)脈跳動(dòng)處直接刺入血管,若刺入動(dòng)脈一般可見鮮紅血液流入注射器,有時(shí)還需微微轉(zhuǎn)動(dòng)一下針頭或上下移動(dòng)一下針頭,方見鮮血流入。有時(shí),往往刺入靜脈,必須重抽之。待抽血完畢,迅速拔出針頭,用干藥棉壓迫止血2~3分鐘。
3.心臟采血
本法最好在麻醉下進(jìn)行,馴服的狗不麻醉也行。將固定在手術(shù)臺(tái)上,前肢向背側(cè)方向固定,暴露胸部,將左側(cè)第3-5肋間的被毛剪去,用碘酒-酒精消毒皮膚。采血者用左手觸摸左側(cè)3-5肋間處,選擇心跳最顯處穿刺。一般選擇胸骨左緣外1cm第4肋間處。取連有6(1/2)號(hào)針頭的注射器,由上述部位進(jìn)針,并向動(dòng)物背側(cè)方向垂直刺入心臟。采血者可隨針接觸心跳的感覺,隨時(shí)調(diào)整刺入方向和濃度,擺動(dòng)的角度盡量小,避免損傷心肌過重,或造成胸腔大出血。當(dāng)針頭正確刺入心臟時(shí),血即可進(jìn)入抽射器,可抽取多量血液。
4.耳緣靜脈采血
本法宜取少量血液作血常規(guī)或微量酶活力檢查等。有訓(xùn)練的狗不必綁嘴,剪去耳尖部短毛,即可見耳緣靜脈,手法基本與兔相同。
5.頸靜脈
狗不需麻醉,經(jīng)訓(xùn)練的狗不需固定,未經(jīng)訓(xùn)練的狗應(yīng)予固定。取側(cè)臥位,剪去頸部被毛約10×3cm2范圍,用碘酒、酒精消毒皮膚。將狗頸部拉直,頭盡量后抑。用左手拇指壓住頸靜脈入胸部位的皮膚。使頸靜脈怒張,右手取連有6(1/2)號(hào)針頭的注射器。針頭沿血管平行方向向心端刺往前血管。由于此靜脈在皮下易滑動(dòng),針刺時(shí)除用左手固定好血管外,刺入要準(zhǔn)確。取血后注意壓迫止血。采用此法一次可取較多量的血。
貓的采血法基本與狗相同。常采用前肢皮下頭靜脈、后肢的股靜脈、耳緣靜脈取血。需大量血液時(shí)可從頸靜脈取血。方法見前述。
(五)猴采血法
與人類的采血法相似,常用者有以下幾種:
1.毛細(xì)血管采血 需血量少時(shí),可在猴拇指或足跟等處采血。采血方法與人的手指或耳垂處的采血法相同。
2.靜脈采血 最宜部位是后肢皮下靜脈及外頸靜脈。后肢皮下靜脈的取血法與狗相似。
用外頸靜脈采血時(shí),把猴固定在猴臺(tái)上,側(cè)臥,頭部略低于臺(tái)面,助手固定猴的頭部與肩部。先剪去頸部的毛,用碘酒-酒精消毒,即可見位于上頜角與鎖骨中點(diǎn)之間的怒張的外頸靜脈。用左手拇指按住靜脈,右手持連6(1/2)號(hào)針頭的注射器,其它操作與人的靜脈取血同。
也可在肘窩、腕骨、手背及足背選靜脈采血。但這些靜脈更細(xì)、易滑動(dòng)、穿刺難,血流出速度慢。
3.動(dòng)脈采血 股動(dòng)脈可觸及。取血量多時(shí)常被優(yōu)先選用,手法與狗股動(dòng)脈采血相似。此外,肱動(dòng)脈與橈動(dòng)脈也可用。
(六)羊的采血方法
常采用頸靜脈取血方法。也可在前后肢皮下靜脈取血。頸靜脈粗大,容易抽取,而且取血量較多,一般一次可抽取50-100ml。
將羊蹄捆縛,按倒在地,由助手用雙手握住羊下頜,向上固定住頭部。在頸部一側(cè)外緣剪毛約2寸范圍,碘酒、酒精消毒。用左手拇指按壓頸靜脈,使之怒張,右手取連用粗針頭的注射器沿靜脈一側(cè)以39度傾斜由頭端向心方向刺入血管,然后緩緩抽血至所需量。取血完畢,拔出針頭,采血部位以酒精棉球壓迫片刻,同時(shí)迅速將血液注入盛有玻璃珠的滅菌燒瓶?jī)?nèi),振蕩數(shù)分鐘,脫去纖維蛋白,防止凝血,或?qū)⒀褐苯幼⑷胙b有凝劑的燒瓶?jī)?nèi)。
(七)雞、鴿、鴨的采血方法
雞和鴿常采用的取血方法,是從其翼根靜脈取血。如需抽取血時(shí),可將動(dòng)脈翅膀展開,露出腋窩,將羽毛拔去,即可見到明顯的翼根靜脈,此靜脈是由翼根進(jìn)入腋窩的一條較粗靜脈。有碘酒、酒精消毒皮膚。抽血時(shí)用左手拇指、食指壓迫此靜脈向心端,血管即怒張。右手取連有5(1/2)號(hào)針頭的注射器,針頭由翼根向翅膀方向沿靜脈平行刺入血管內(nèi),即可抽血,一般一只成年動(dòng)物可抽取10-20ml血液。也常采用右側(cè)頸靜脈取血。右側(cè)頸靜脈較左側(cè)粗,故用右側(cè)頸靜脈。以食指和中指按住頭的一側(cè),用酒精棉球消毒右側(cè)頸靜脈的部位。以拇指輕壓頸根部以使靜脈充血。右手持注射器刺入靜脈取血。常采用取血法還有爪靜脈取血和心臟取血。在爪根部與爪中所見血管尖端之間切斷血管,以吸管或毛細(xì)胞直接取血。亦可將注射針刺入心臟內(nèi)取血。
急性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中常以血壓、呼吸等為指標(biāo),以靜脈注射、放血等為實(shí)驗(yàn)方法。需要曝露氣管、頸總動(dòng)脈,頸外靜脈,股動(dòng)脈,股靜脈,并做相應(yīng)的插管,以及分離迷走神經(jīng),減壓神經(jīng)及股神經(jīng)等。因此手術(shù)主要頸部及股部進(jìn)行,現(xiàn)分述如下:
(一)兔、狗頸部手術(shù)
頸部手術(shù)的目的在于暴露氣管、頸部血管并作相應(yīng)的插管以及分離神經(jīng)等。頸部手術(shù)成敗的關(guān)鍵在于熟悉動(dòng)物頸部及手術(shù)要領(lǐng),防止損傷血管和神經(jīng)(圖11-19)現(xiàn)以兔為例,說明如下:
圖11-20 家兔頸部血管神經(jīng)解剖位置示意圖
1.家兔背位固定于兔臺(tái)上,頸部剪毛。
2.動(dòng)物麻醉 一般作局部浸潤麻醉,在頸部正中線皮下注1%普魯卡因,亦可選用20%烏拉坦作全身麻醉。
3.氣管及頸部血管神經(jīng)分離術(shù)
⑴氣管暴露術(shù):用手術(shù)刀沿頸部正中線從甲狀軟骨處向下靠近胸骨上緣作一切口(兔長約4~6cm,狗的長約10cm);因兔頸部皮膚較松馳亦可用手術(shù)剪沿正中線剪開。切開皮膚后,以氣管為標(biāo)志從正中線用止血鉗鈍性分離正中的肌群和筋膜即可暴露氣管,分離食道與氣管,在氣管下穿過一條粗線備用。
⑵頸總動(dòng)脈分離術(shù):正中切開皮膚及皮下筋膜,暴露肌肉。將肌肉層與皮下組織分開。此時(shí)清楚可見在頸中部位有兩層肌肉。一層與氣管平行,復(fù)于氣管上,為胸骨舌骨肌。其上又有一層肌肉呈V字形走行向左右兩側(cè)分開。此層為胸鎖乳突肌。用鑷子輕輕夾住一側(cè)的胸鎖乳突肌,用止血鉗在兩層肌肉的交接處(即V形溝內(nèi))將它分開(注意,切勿在肌肉中分,以防出血)。在溝底部即可見到有搏動(dòng)的頸總動(dòng)鞘。用眼科鑷子(或紋式止血鉗)細(xì)心剝開鞘膜,避開鞘膜內(nèi)神經(jīng),分離出長約3-4cm的頸總動(dòng)脈,左其下穿兩根線備用。
頸動(dòng)脈竇分離術(shù):在剝離兩側(cè)頸總動(dòng)脈基礎(chǔ)上,繼續(xù)小心地沿兩側(cè)上方深處剝離,直至頸總動(dòng)脈分叉處膨大部分,即為頸動(dòng)脈竇,剝離時(shí)勿損傷附近的血管神經(jīng)。
⑶頸部迷走、交感、減壓神經(jīng)分離術(shù):于家兔頸部,在找到頸動(dòng)脈鞘以后,將頸總動(dòng)脈附近的結(jié)締組織薄膜鑷住,并輕拉向外側(cè)使薄膜張開,即可見薄膜上數(shù)條神經(jīng),根據(jù)各條神經(jīng)的形態(tài)、位置和走向等特點(diǎn)來辨認(rèn),迷走神經(jīng)最粗,外觀最白,位于頸總動(dòng)脈外側(cè),易于識(shí)別。交感神經(jīng)比迷走神經(jīng)細(xì),位于頸總動(dòng)脈的內(nèi)側(cè),呈淺灰色;減壓神經(jīng)細(xì)如頭發(fā),位于迷走神經(jīng)和交感神經(jīng)之間,在家兔為一獨(dú)立的神經(jīng),沿交感神經(jīng)外側(cè)后行走,但在人、狗此神經(jīng)并不單獨(dú)行走,而是行走于迷走、交感干或迷走神經(jīng)中。將神經(jīng)細(xì)心分離出2-3cm長即可,然后各穿細(xì)線備用。
⑷頸外靜脈暴露術(shù) 頸外靜脈淺,位于頸部皮下,其屬支外腭靜脈和內(nèi)腭靜脈,頸部正中切口后,用手指從皮膚外將一側(cè)部組織頂起,在胸鎖突乳肌外緣,即可見很粗而明顯的頸外靜脈。仔細(xì)分離長約3-4cm的頸外靜脈,穿兩線備用。
4.氣管及頸部血管插管術(shù)
在前述分離術(shù)的基礎(chǔ)上,按需要選作下列插管術(shù)。
⑴氣管插管術(shù):暴露氣管后在氣管中段,于兩軟骨環(huán)之間,剪開氣管口徑之半,在向頭端作一小縱切口呈倒“T”形。用鑷子夾住T形切口的一角,將適當(dāng)口徑的氣管套管由切口向心端插入氣管腔內(nèi),用粗線扎緊,再將結(jié)扎線固定于“Y”形氣管插管分叉處,以防氣管套管脫出。
⑵頸總動(dòng)脈插管術(shù):頸總動(dòng)脈主要用于測(cè)量頸動(dòng)脈壓。為此,在插管前需使動(dòng)物肝素化,并將口徑適宜的充滿抗凝液體(也可用生理鹽水)的動(dòng)脈套管(也可用塑料管)準(zhǔn)備好,將頸總動(dòng)脈離心端結(jié)扎線之間。插管時(shí)以左手拇指及中指拉住離心端結(jié)扎線頭,食指從血管背后輕扶血管。右手持銳利的眼科剪,使與血管呈45度角,在緊靠離心端結(jié)扎線處向心一剪,剪開動(dòng)脈壁之周徑1/3左右(若重復(fù)數(shù)剪易造成切緣不齊,當(dāng)插管時(shí)易造成動(dòng)脈內(nèi)膜內(nèi)卷或插入層間而失敗),然后持動(dòng)脈套管,以其尖端余面與動(dòng)脈平均地向心方向插入動(dòng)脈內(nèi),用細(xì)線扎緊并在套管分叉處打結(jié)固定。最后將動(dòng)脈套管作適當(dāng)固定,以保證測(cè)壓時(shí)血液進(jìn)出套管之通暢。
⑶頸外靜脈插管術(shù):頸外靜脈可用于注射、輸液和中盡靜脈壓之測(cè)量。血管套管插入方法與股靜脈相似,現(xiàn)將用于中心靜脈壓測(cè)量的插和作一簡(jiǎn)介:
在插管前先將兔肝素化,并將聯(lián)接靜脈壓檢壓計(jì)的細(xì)塑料管導(dǎo)管充盈含肝素之生理鹽水。在導(dǎo)管上作一長5-8cm的記號(hào),導(dǎo)管準(zhǔn)備好后,先將靜脈遠(yuǎn)心端結(jié)扎,靠近結(jié)扎點(diǎn)的向心端作一剪口,將導(dǎo)管插入剪口,然后一邊拉結(jié)扎線頭使頸外靜脈與頸矢狀面、冠狀面各呈45度角,一邊輕柔地向心端緩慢插入,遇有阻抗即退回改變角度重插,切不可硬插(易插破靜脈進(jìn)入胸腔)一般達(dá)導(dǎo)管上記號(hào)為止,此時(shí)可達(dá)右心房入口處。若導(dǎo)管插管成功,則可見靜脈壓檢壓計(jì)水面或漂浮于中心靜脈壓數(shù)值附近隨呼吸而上下波動(dòng)。
(二)兔、狗股部手術(shù)
股部手術(shù)目的在于分離股神經(jīng)、股動(dòng)、靜脈及進(jìn)行股動(dòng)、靜脈插管,以備放血、輸血輸液、注射藥物等用。狗肌部神經(jīng)、血管解剖特點(diǎn)見圖11-20。
圖11-20 狗股部神經(jīng)、血管解剖特點(diǎn)
狗、兔等動(dòng)物手術(shù)方法基本相同,F(xiàn)以兔為例其基本步驟如下:
1.動(dòng)物背位固定于兔臺(tái)上,腹股溝部剪毛。
2.用手指觸摸股動(dòng)脈搏動(dòng),辨明動(dòng)脈走向,在該處作局部麻醉并作方向一致長約4-5cm的切口。用止血鉗小心分離肌肉及深部筋膜,便清楚地暴露出股三角區(qū)。骨三角區(qū)上界為鼠蹊韌帶,內(nèi)界為縫匠肌,外界為內(nèi)收長肌。肌動(dòng)脈及神經(jīng)即由此三角區(qū)通過。股神經(jīng)位于外側(cè),股靜脈位于內(nèi)側(cè),肌動(dòng)脈位于中間偏后。
3.用止血鉗細(xì)心將股神經(jīng)首先分出,然后分離股動(dòng)、靜脈間的結(jié)締組織,清楚地暴露股靜脈,如作插管可分離出一段靜脈(約2-2.5cm)。穿兩根細(xì)線備用。再仔細(xì)分離股動(dòng)脈,將股動(dòng)脈與其部的組織分離開,長約2-2.5cm。切勿傷及股動(dòng)脈分支。動(dòng)脈下方穿兩根細(xì)線備用。
4.在動(dòng)物行肝素化后作股動(dòng)、靜脈插管。狗的血管粗大,插管較易。家兔血管細(xì),插管較難;因此要細(xì)致耐心和掌握要領(lǐng)。
(1)股動(dòng)脈插管術(shù):于肌動(dòng)脈近心端用動(dòng)脈夾夾住,近心端用細(xì)線結(jié)扎,牽引此線在貼近遠(yuǎn)心端結(jié)扎處剪開血管向心插入動(dòng)脈套針或塑料管,結(jié)扎固定后備放血或注射用。
(2)股靜脈插管術(shù):股靜脈插管術(shù),除不需用動(dòng)脈夾外,基本與股動(dòng)脈插管相同。但因靜脈于遠(yuǎn)心端結(jié)扎后靜脈塌陷呈細(xì)線狀,較難插管,因此可試用靜脈充盈插管法。即:在股靜脈近心端用血管夾夾。ㄒ部捎镁提起),活動(dòng)肢體使股靜脈充盈,股靜脈遠(yuǎn)心端結(jié)扎線打一活扣,待手術(shù)者剪口插入套針后,再由助手迅速結(jié)扎緊。
當(dāng)實(shí)驗(yàn)進(jìn)行中因麻醉過量、大失血、過強(qiáng)的創(chuàng)傷、窒息等各種原因,而使動(dòng)物血壓急劇下降甚至測(cè)不到。呼吸極慢而夫規(guī)則甚至呼吸停止、角膜反射消失等臨床死亡癥狀時(shí),應(yīng)立即進(jìn)行急救。急救的方法可根據(jù)動(dòng)物情況而定。對(duì)狗、兔、貓常用的急救措施有下面幾種。
(一)針刺
針刺人中穴對(duì)挽救家兔效果較好。對(duì)狗用每分鐘幾百次頻率的脈沖電刺激膈神經(jīng)效果較好。
(二)注射強(qiáng)心劑
可以靜脈注射0.1%腎上腺素1ml,必要時(shí)直接作心臟內(nèi)注射。腎上腺素具有增強(qiáng)心肌收縮力,使心肌收縮幅度增大與加速房室傳導(dǎo)速度、擴(kuò)張冠狀動(dòng)脈、增強(qiáng)心肌供血、供氧及改善心肌代謝、刺激高位及低位心臟起搏點(diǎn)等作用。
當(dāng)動(dòng)物注射腎上腺素后,如心臟已搏動(dòng)但極為無力時(shí),可從靜脈或心腔內(nèi)注射1%氯化鈣5ml。鈣離子可興奮心肌緊張力,而使心肌收縮加強(qiáng),血壓上升。
(三)注射呼吸中樞興奮藥
可從靜脈注射山梗萊堿或尼可剎米。給藥劑量和藥理作用如下:
尼可剎米:每條動(dòng)物一次注25%1ml。此藥可直接興奮延髓呼吸中樞,使呼吸加速加深;對(duì)血管運(yùn)動(dòng)中樞的興奮作用較弱。在動(dòng)物抑制情況下作用更明顯。
山梗萊堿:每條動(dòng)物一次可注入1%0.5ml。此藥可刺激頸動(dòng)脈體的化學(xué)感受器,反射性地興奮呼吸中樞;同時(shí)此藥對(duì)呼吸中樞還有輕微的直接興奮作用。作為呼吸興奮藥,它比其他藥作用迅速而顯著。呼吸可迅速加深加快,血壓亦同時(shí)升高。
(四)動(dòng)脈快速注射高滲葡萄糖液
一般常采用經(jīng)動(dòng)物肌動(dòng)脈逆血流加壓、快速、沖擊式的注入40%葡萄糖溶液。注射量根據(jù)動(dòng)物而定,如狗可按2-3ml/kg體重計(jì)算。這樣可刺激動(dòng)物血管內(nèi)感受器,反射性地引起血壓呼吸的改善。
(五)動(dòng)脈快速輸血、輸液
在作失血性休克或死亡復(fù)活等實(shí)驗(yàn)時(shí)采用?稍趧(dòng)物股動(dòng)脈插一軟塑料套管,連接加壓輸液裝置(血壓計(jì)連接輸液瓶上口,下口通過膠皮管連接塑料套管)。當(dāng)動(dòng)物發(fā)生臨床死亡時(shí),即可加壓(180-2000mmHg)快速從股動(dòng)脈輸血和低分子右旋糖酐。如實(shí)驗(yàn)前動(dòng)物曾用肝素抗凝,由于微循環(huán)血管中始終保持通暢,不出現(xiàn)血管中血液凝固現(xiàn)象,因此就是動(dòng)物出現(xiàn)臨床死亡后數(shù)分鐘,采用此種急救措施仍易救活。
(六)人工呼吸
可采用雙手壓迫動(dòng)物胸廓進(jìn)行人工呼吸。如有電動(dòng)人工呼吸器,可行氣管分離插管后,再連接人工呼吸器進(jìn)行人工呼吸。一旦見到動(dòng)物自動(dòng)呼吸恢復(fù),即可停止人工呼吸。
有條件時(shí),當(dāng)動(dòng)物呼吸停止,而心搏極弱或剛停止時(shí),可用5%CO2和60%O2的混合氣體進(jìn)行人工呼吸,效果更好。
采用人工呼吸器時(shí),應(yīng)調(diào)整其容量:大鼠為50次/分鐘,每次8ml/kg(即400ml/kg/分鐘);兔和貓為30次/分鐘,每次10ml/kg(即300ml/kg/分鐘);犬為20次/分鐘,每次100ml/kg(即2000ml/kg/分鐘)。
(一)蛙類
常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊椎的方法處死。將蛙用溫布包住,露出頭部,左手執(zhí)蛙,并且用食指按壓其頭部前端,拇指按壓背部,使頭前俯;右手持金屬探針由頭前端沿線向尾方刺觸,觸及凹陷處即枕骨大孔所在。將探針由凹陷處垂直刺入,刺破皮膚即入枕骨大孔。這時(shí)將探針尖端轉(zhuǎn)向頭方,向前探入顱腔,然后向各方攪動(dòng),以搗毀腦組織,如探針確在顱腔內(nèi),實(shí)驗(yàn)者可覺出針在四面皆壁的腔內(nèi)。腦組織搗毀后,將探針退出,再由枕骨大孔刺入,并轉(zhuǎn)向尾方,與脊柱平行刺入椎管,以破壞脊髓。腦和脊髓是否被完全破壞,可檢查動(dòng)物四肢肌肉的緊張性是否完全消失。拔出探針后,用一小干棉球?qū)⑨樋锥伦,以防止其出血?/p>
操作過程中要防止毒腺分泌物射入實(shí)驗(yàn)者眼內(nèi)。如被射入時(shí),即需立即用生理鹽水沖洗眼睛。
(二)大鼠和小鼠
1.脊椎脫臼法
右手抓住鼠用力向后拉,同時(shí)左手拇指與食指用力向下按住鼠頭,將脊髓與腦髓拉斷,鼠便立即死亡。
2.斷頭法
實(shí)驗(yàn)者戴上棉綠紗手套,用右手握住大鼠頭部,左手握住背部,露出頸部,助手用剪刀在鼠頸部將鼠頭剪掉。小鼠處死法相同。
3.擊打法
右m.f1411.cn/yishi/手抓住鼠尾,提起,用力摔擊其頭部,鼠痙攣后立即死亡。用小木錘用力擊打鼠頭部也可致死。
4.急性大失血法
可采用鼠眼眶動(dòng)脈和靜脈急性大量失血方法使鼠立即死亡。
5.化學(xué)致死法
吸入一氧化碳,大、小鼠在一氧化碳濃度為0.2-0.5%環(huán)境中即可致死。
皮下注射士的年,吸入乙醚、氨仿,均可致死。士的年注射量,小鼠為0.76~2.0mg/kg體重,大鼠3.0-3.5ml/kg體重。氯化鉀處死大鼠劑量:25%溶液0.6ml/只靜脈注入。
(三)狗、貓、兔、豚鼠
1.空氣栓塞法
向動(dòng)物靜脈內(nèi)注入一定量的空氣,使之發(fā)生栓塞而死。當(dāng)空氣注入靜脈后,可在右心隨著心臟的跳動(dòng)使空氣與血液相混致血液成泡沫狀,隨血液循環(huán)到全身。如進(jìn)入肺動(dòng)脈,可阻梗其分支,進(jìn)入心臟冠狀動(dòng)脈,造成冠狀動(dòng)脈阻塞,發(fā)生嚴(yán)重的血液循環(huán)障礙,動(dòng)物很快致死。一般兔、貓等靜脈內(nèi)注入20-40ml空氣即可致死。每條狗由前肢或后肢皮下靜脈注入80~150ml空氣,可很快致死。
2.急性失血法
先使動(dòng)物輕度麻醉,如狗可按每公斤體重靜脈注射硫噴妥納20-30mg,動(dòng)物即很快入睡。暴露股三角區(qū),用鋒利的殺狗刀在股三角區(qū)作一個(gè)約10cm的橫切口,把股動(dòng)、靜脈全切斷,立即噴出血液。用一塊濕紗布不斷擦去股動(dòng)脈切周圍處的血液和血凝塊,同時(shí)不斷的用自來水沖洗流血,使股動(dòng)脈切口處保持暢通,動(dòng)物3~5分鐘內(nèi)即可致死。采用此種方法,動(dòng)物十分安靜,對(duì)臟器無損傷,對(duì)活殺采集病理切片標(biāo)本是一種較好的方法。
3.破壞延腦法
如果急性實(shí)驗(yàn)后,腦已暴露,可用器具將延髓破壞,導(dǎo)致動(dòng)物死亡。對(duì)家兔也可用木錘用力錘擊其后腦部,損壞延腦,造成死亡。
4.開放性氣胸法
將動(dòng)物開胸,造成開放性氣胸。這時(shí)胸膜腔的壓力與大氣壓力相等,肺臟因受大氣壓縮發(fā)生肺萎陷,縱隔擺動(dòng),動(dòng)物窒息而死。
5.化學(xué)藥物致死法
靜脈內(nèi)注入一定量的氯化鉀溶液,使動(dòng)物心肌失去收縮能力,心臟急性擴(kuò)張,致心臟馳緩性停跳而死亡。每條成年兔由兔耳緣靜脈注入10%氯化鉀溶液5~10ml;每條成年狗由狗前肢或后肢下靜脈注入20~30ml。即可致死。
靜脈內(nèi)注入一定量的福爾馬林溶液,使血液內(nèi)蛋白凝固,動(dòng)物由于全身血液循環(huán)嚴(yán)重障礙和缺氧而死。每條成年狗靜脈注入10%福爾馬林溶液20ml即可致死。也可將福爾馬林與酒精按一定比例配成動(dòng)物致死液應(yīng)用。
皮下注射士的年致死:豚鼠劑量為3.0-4.4mg/kg體重,兔0.5-0.5mg/kg體重,狗0.3-0.42mg/kg體重,貓1.0-2.0mg/kg體重。
經(jīng)口或注年DDT致死;(LD50):豚鼠:經(jīng)口0.4g/kg體重,皮下0.9g/kg體重。兔:經(jīng)口0.3g/kg體重,皮下0.25g/kg體重;靜脈0.043g/kg體重。狗:靜脈0.067g/kg體重。