鵝巴氏桿菌病的確診方法有哪些?
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(1)微生物學(xué)檢驗(yàn)采取疑似巴氏桿菌病鵝的心血、肝、脾、腎等有病變的內(nèi)臟器官作為被檢病料。染色鏡檢:被檢病料做觸片或涂片,待自然干燥后用火焰固定,美藍(lán)染色或瑞氏、姬姆薩染色鏡檢,如見兩極染色卵圓形的小桿菌,或革蘭氏染色,鏡檢見有革蘭氏陰性、大小一致、卵圓形的小桿菌,可初步確診。分離培養(yǎng):將被檢病料接種于
綿羊鮮血瓊脂培養(yǎng)基,或馬丁氏瓊脂培養(yǎng)基,或血清瓊脂培養(yǎng)基等平皿,于37℃溫箱作用24小時(shí),取其中細(xì)小、半透明、圓整、淡灰色、光滑的菌落接種于鮮血斜面培養(yǎng)基,供涂片鏡檢、生化反應(yīng)、動(dòng)物接種、血清學(xué)檢驗(yàn)用。(2)動(dòng)物接種將被檢鵝的心血或肝臟、脾臟磨細(xì),用滅菌生理鹽水做1:5~1: 10稀釋,或?qū)?4小時(shí)斜面純培養(yǎng)物加入5~10毫升滅菌生理鹽水洗下,作為接種材料。青年鵝皮下或肌肉注射0.5—1.O毫升,或靜脈注射o.5毫升,或滴鼻0.1~0.2毫升,接種后于24~48小時(shí)死亡,剖檢見有典型鵝巴氏桿菌病病理變化即可確診。小白
鼠皮下或腹部注射0.2~o.5毫升,于24~48小時(shí)死亡,剖檢內(nèi)臟器官呈
敗血癥病理變化。(3)抗原型鑒定莢膜物質(zhì)(K)抗原型鑒定:將被鑒定菌株接種于馬丁氏瓊脂斜面培養(yǎng)基,于37℃溫箱作用24小時(shí),用2~3毫升滅菌生理鹽水洗下,并收集于小試管中,置于56℃水浴箱中30分鐘,促進(jìn)莢膜物質(zhì)由菌體上解脫下來,然后經(jīng)6 000~8 000轉(zhuǎn)/分,離心30~60分鐘,上清液即為所制備的莢膜抗原。取被檢菌株莢膜抗原約0.3毫升,加入經(jīng)福爾馬林固定的0.2毫升洗凈的綿羊紅胞,充分混合后置37℃溫箱或水浴箱中作用1~2小時(shí)。然后經(jīng)3 000轉(zhuǎn)/分,離心30分鐘,棄上清液,沉淀紅細(xì)胞,再用約10毫升生理鹽水洗一次紅細(xì)胞,除去游離的未被紅細(xì)胞吸附的莢膜抗原。離心收集的致敏紅細(xì)胞,加入20毫升生理鹽水,配制成1%的致敏紅細(xì)胞懸液。各取1%的致敏紅細(xì)胞懸液0.5毫升,分別加入1: 40稀釋的各型抗血清(A、B、D、E、F)0.5毫升于試管內(nèi),搖動(dòng)試管,使之混合均勻,放置于室溫中2小時(shí)或37℃溫箱作用1小時(shí)后觀察。陽性者紅細(xì)胞呈凝集現(xiàn)象,陰性者紅細(xì)胞集中于試
管底部。判定結(jié)果的方法與一般紅細(xì)胞凝集反應(yīng)相同,通常以++號為標(biāo)準(zhǔn)。菌體(O)抗原型鑒定;將被鑒定的菌株接種于馬丁氏瓊脂斜面或克氏瓶,37℃溫箱作用24小時(shí),每個(gè)斜面加入l毫升,每個(gè)克氏瓶加入20毫升含8. 5%
氯化鈉、0.02摩/升的磷酸緩沖液洗下苗苔,收集于試管中,置100℃水浴箱內(nèi)1小時(shí),然后經(jīng)6 000~8 000轉(zhuǎn)/分,離心30分鐘,棄上清液,將沉淀物加入等量的緩沖液,并加入福爾馬林防腐,作為被檢“O”抗原。保存于冰箱內(nèi)備用。用8.5%氯化鈉鹽水配制的0.9%瓊脂糖或瓊脂澆入平板或玻璃板上,使其厚度為3~3.5毫米。凝固后用打孔器打孔,孔徑一般為4毫米,孔距為6毫米,中心孔加入被榆抗原,周圍孔加入標(biāo)準(zhǔn)血清,于37℃溫箱放置24~48小時(shí)。陽性者抗腺孔與抗體孔之間出現(xiàn)白色沉淀帶。(4)血清學(xué)檢驗(yàn)血清學(xué)診斷的目的,在于應(yīng)用血清學(xué)的凝集方法對鵝群進(jìn)行普查診斷和免疫效果的檢測。用標(biāo)準(zhǔn)A型、B型、D型、E型、F型5型菌株,或當(dāng)?shù)胤蛛x的菌株按上述介紹方法制備成1%的致敏綿羊紅細(xì)胞作為診斷抗原。試管法:將待檢
鵝血清做成不同稀釋度,分別加入等量診斷抗原,搖勻后放置于室溫中2小時(shí)或37℃溫箱作用1小時(shí)觀察。凝集價(jià)在1:40以上者為陽性反應(yīng)。玻片法:取被檢血清0.1毫升(約2滴)滴于玻片上,隨后加入等量診斷抗原,于15~20℃下?lián)u動(dòng)玻片,使抗原與被檢血清均勻混合,1~3分鐘內(nèi)出現(xiàn)絮狀物,液體透明者為陽性。
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通過細(xì)菌分離培養(yǎng)
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實(shí)驗(yàn)室檢測
畜牧導(dǎo)航:
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